医院护理培训课件：《临床微生物标本采集送检指南》.ppt

微生物检验标本采集运送指南 　　　　　　 微生物检验标本采集运送指南 　 　标本的采集和运送具有重要意义，其质量直接影响到微生物实验室检测结果的可靠性。标本的采集和处理方式不当将导致病原体分离失败，或无法确定真正致病的微生物，给医院感染的病原学诊断造成困难，因此必须规范微生物检验标本的采集、运送，保证实验检测前标本质量。 标本 类型 采集 时间 温度 转运 报告时间 （工作日） 采样限制 注意事项 原则 装置和 最小量 血液 骨髓 1、培养瓶消毒：用75%乙醇消毒橡胶塞30s。 2、静脉穿刺消毒：严格按皮肤消毒步骤操作（酒精-碘酊-酒精），直径达5cm以上。 3、血液培养需特别注意消毒，因许多微生物、尤其葡萄球菌属通常存在皮肤表面或近表层处，易造成污染。 4、采血时机：最好在抗菌治疗前或停用抗菌药物24h以后，以寒战、发热时采集为宜。 血培养瓶有两种规格，采血量不一样。 成人瓶： 8～10ml/瓶 小儿瓶： 1～3ml/瓶 ≤2h 常温 禁止冷藏 阴性：5d 阳性：随时报告危急值，最终报告及时发出 建议从不同部位各采1瓶，共2瓶同时送检。 1、采集部位通常为肘静脉，疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉为宜。 2、除非怀疑有导管相关性血流感染，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。 3、注射器无菌穿刺取血后，直接注入血培养瓶，勿换针头。 4、如须做厌氧菌培养，应先注入厌氧培养瓶，避免注入空气，然后注入需氧培养瓶。 标本 类型 采集 时间 温度 转运 报告时间 （工作日） 采样限制 注意事项 原则 装置和 最小量 静脉 导管 按导管保留与否采取不同送检方法。 1、如保留导管，则外周静脉穿刺和留置导管采血各一套。 2、决定拔除导管，则取2套外周血，无菌方法拔除导管，取导管尖端。 ≤2h 常温 阴性：3-5d 阳性：随时报告危急值，最终报告及时发出 1/d# 1、导管尖端标本：消毒导管周围皮肤，拔出导管，无菌剪刀取下约5cm，置于无菌容器中送检。 2、经留置导管采血：彻底消毒，无菌抽吸0.5-1ml血液弃去，另取针管抽吸8-10ml。 标本 类型 采集 时间 温度 转运 报告时间 （工作日） 采样限制 注意事项 原则 装置和 最小量 脑 脊 液 怀疑患者为中枢神经系统感染时，宜首先进行脑脊液培养。 无菌试管 1-2ml. 阴性：3～5d 阳性：随时报告危急值，最终报告及时发出 无 标本应在用抗菌药物前采集。 眼 结 膜 防止采样时被黏膜上的正常菌群污染，确保检验结果的准确性。 无菌 试管 ≤1h 常温 禁止冷藏 阴性：3～5d 阳性：随时报告危急值，最终报告及时发出 无 1、采集数小时前不得用消毒药物，刚治疗过或药物冲洗过的患者，宜12-24h后采集标本。 2、即使只有1只眼睛感染也需要取2只结膜的标本，以排除原有菌群干扰。 标本 类型 采集 时间 温度 转运 报告时间（工作日） 采样 限制 注意事项 原则 装置和 最小量 脓肿 伤口 组织 1、采集前用无菌盐水冲洗去除表面污染菌。 2、用无菌穿刺法抽吸深部脓液，或用无菌拭子从伤口深处采集渗出物。 3、小样本组织应滴加几滴无菌盐水保持湿润。 无菌容器 ≥1ml 常温≤1h 如不能及时运送或接种，应 4℃冷藏 阴性：3～5d 阳性：随时报告危急值，最终报告及时发出 1/d# 1、敷用药物2h内、烧伤12h内不应此埃及标本 2、深部感染应同时做需氧和厌氧培养。厌氧培养最好以针管直接抽取标本。 3、呈送组织的量尽可能多，不要呈送表面简单摩擦的拭子. 穿刺液、心包液、胸腹水、关节液、等 1、务必彻底消毒 2、尽量留取多量标本。 常温≤1h 如不能及时运送或接种，应 4℃冷藏 阴性：3～5d 阳性：随时报告危急值，最终报告及时发出 无 标本 类型 采集 时间 温度 转运 报告时间 （工作日） 采样限制 注意事项 原则 装置和 最小量 引流液 1、用75%酒精消毒导管采集处。 2、用注射器从引流管无菌采集2～3ml 无菌容器 ≥1ml ≤2h 常温如不能及时运送或接种，应4℃冷藏，但不应超过24h 阴性：2d 阳性：及时发送报告 标本不能直接从引流袋放出，因引流液在袋中潴留时间太长容易孳生细菌 肺泡灌洗液、气管抽吸物、痰、等 1、用温开水清洗或漱口去除口腔表面菌 2、从肺深部咳出痰液，采集到无菌容器内。 无菌容器 ≥1ml 1/d# 对不能咳痰的病人，应经抽吸获得标本，最好的标本应≤10个鳞状细胞/LPF 标本 类型 采集 时间 温度 转运 报告时间 （工作日） 采样限制 注意事项 原则 装置和 最小量 鼻 用经无菌盐水湿润的拭子插入鼻