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农化分析技术 授课教师：雷恩春 学 时：理论40学时、实验40学时 授课班级：2006级工程4、5班 授课学期：2006-2007第二学期 第一章 样品的采集和制备 第一节 土壤样品的采集和制备 第二节 植物样品的采集和制备 第三节 肥料样品的采集和制备 第二节 植物样品的采集和制备 一、植物组织样品的采集 二、植物组织样品制备和保存 三、籽粒样品的采集和制备 四、瓜果样品的采集和制备 一、植物组织样品的采集 1、首先要选定样株，样株必须有充分的代表性。 2、决定取样的部位和器官。 3、确定采样时间 4、各元素在植物营养中的特殊性与营养诊断用样品的采集 1、选定样株 组成每一个平均样品的样株数目须视作物种类、种植密度、植株长相、长势、生育期以及要求的准确度而定 。 受病虫害或机械损伤的、田边路旁的都不应采集。 如果为了某一特定目的例如缺素诊断而采样时，则应注意样株的典型性，并要同时在附近地块另行选取有对比意义的正常典型样株 2、决定取样的部位和器官 原则是所选部位和组织器官具有最大的指导意义，即采集对某种养分丰缺最敏感的部位和器官。 大田作物在生殖生长开始时期常采取主茎或主枝顶部新成熟的健壮叶或功能叶；苗期诊断则多采集整个地上部分；开始结实后，营养体中的养分转化很大，不宜再作叶分析，故一般谷类作物在授粉后即不再采诊断用的样品。如果为了研究施肥等措施对产品品质的影响，则当然要在成熟期采取茎杆、籽粒、果实或块茎、块根等样品。 果树和林木等多年生植物的营养诊断通常采用“叶分析”或不带叶柄的“叶片分析”个别果树如葡萄则常做“叶柄分析”。 3、确定采样时间 通常以上午8—10时为宜，因为这时植物的生理活动已趋活跃，地下部的根系吸收速率与地上部正趋手上升的光合作用强度接近动态平衡。此时植物组织中的养料贮量最能反映根系养料吸收与植物同化需要的相对关系，因此最具有营养诊断的意义。此外，在这时间采样对于当天分析工作的安排也最方便。 4、各元素在植物营养中的特殊性 （1）氮：存在形态多，易变动，许多植物的叶中不积累硝态氮，所以最常用的“叶分析”不测定硝态氮，而以全氮含量来衡量植株氮营养的水平。 （2）磷：移动性很大，可再利用，必威体育精装版的成熟叶中的全磷含量比较稳定，所以诊断磷素营养状况较为可靠。 4、各元素在植物营养中的特殊性 (3)钾：植物中的钾几乎都以离子形态存在，所以用浸提法(例如用2％HOAc或水)测得的钾量能接近于全钾量。由于钾容易移动，它多分布于芽、幼叶、根尖等代谢活性大的组织器官中。比较样株上下部组织中的浓度，可以诊断钾营养状况时，如果下部成熟组织的含钾量等于甚或超过上部幼嫩组织者，表明钾的供应良好。 二、植物组织样品的制备和保存 (一)样品洗涤 (二)样品干燥 (三)样品粉碎 (四)新鲜样品保存 (五)干燥样品保存 (一)样品洗涤 1、组织尚未萎蔫时洗刷，否则某些易溶养分如钾、钙、水溶性糖等被洗出来。 2、洗涤方法：用湿布或毛刷仔细擦净表面污染物。样品很多时，可用水冲洗，尽快擦干。 3、微量元素分析用的样品，须用0.1-0.3%的中性洗涤剂洗涤（约30秒），再用自来水冲洗，然后用纯水淋净。 4、不可用过多的水长期浸洗（尤其是叶柄的顶部不要浸在水中），以防钾、钙等易溶养分的损失。 (二)样品干燥 1、测定不易变化的成分则常用干燥样品。 2、洗净的新鲜样品必须尽快干燥，以减少其化学和生物的变化。 3、 干燥分两步完成：在80-90℃干燥15-30分钟（松散组织烘15分钟、致密紧实组织烘30分钟），然后降温至65－70℃逐尽水分。干燥时间须视鲜样水分含量而定，通常12－24小时。 (三)样品粉碎 分析样品的细度须视称样的大小而定，通常可用圆孔直径为1mm的筛，如称样仅1—2克者，宜用0.5mm筛，称样小于1克者，须用0.25或0.1mm筛。 磨样和过筛时应防污染，特别是微量元素分析。 (四)新鲜样品保存 测定易起变化的成分（例如硝态氮，氨基态氮、氰、无机磷、水溶性糖、维生素等）须用新鲜样品。鲜样如需短期保存，必须在冰箱中冷藏，以抑制其变化。分析时将洗净的鲜样剪碎混匀后立即用称量瓶或铝匙等称样，放在瓷研钵中与适当溶剂(或再加石英)共研磨，进行浸提测定。 (五)干燥样品保存 样品过筛后须充分混匀，称量或保存于磨口的广口瓶中，注意内外各贴放一样品标签。 三、籽粒样品的采集和制备 1、个别植株采样：谷类或豆类个别植株的种子须全部留作样品。 2、试验区或大田采样(1)按照组织样品的采法，选定样株后脱粒 ；(2)全区或地块脱粒的种子混匀、铺平，用方格法或四分法缩分，取得约250克样品。 3成批粮食取样：在散装堆中设点取样，或可从包装中扦取原始样品，再用四分法或分样器缩分至500克左右。 4、样