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对胃粘膜损伤有辅助保护功能评价方法技术转让网.doc
对胃粘膜损伤有辅助保护1 试验项目
1.1 动物实验
1.1.1 体重
1.1.2 胃粘膜大体损伤状况
1.1.3 胃粘膜病理损伤积分
1.2 人体试食试验
1.2.1 临床症状
1.2.2 体征
1.2.3胃镜观察
2 试验原则
2.1 动物实验和人体试食试验所列指标均为必做项目。
2.2 无水乙醇、消炎痛致胃粘膜损伤模型慢性胃损伤模型任选其一进行动物实验。
2.3 在进行人体试食时,应对受试样品的安全性作进一步的观察。3 结果判定
3.1 动物实验:实验组与模型对照组比较,大体分与病理表明胃粘膜损伤明显改善,可判定该受试样品动物实验结果为阳性。
3.2 人体试食试验:试食组与对照组比较,临床症状、体征积分明显减少,胃镜复查结果有改善,可判定该受试样品对胃粘膜有辅助保护功能。
对胃粘膜损伤有辅助保护功能检验方法
Method for the Assessment of Protection
of Gastric Mucosa Function
1 动物实验
1.1 原理
在一定时间内给予一定量的受试样品,用对胃粘膜有损伤作用的物质造成急性胃粘膜损伤模型,观察各剂量组胃粘膜的损伤程度;或用对胃粘膜有损伤作用的物质造成慢性胃溃疡模型,在一定时间内给予一定量的受试样品,观察各剂量组胃溃疡的面积和体积,反映受试样品对胃粘膜的保护作用。
1.2 实验动物选用SD或Wistar 健康大鼠,单一性别,10-0克,每组8-12只。
1.3 实验设计及剂量分组人体推荐量的5倍剂量组,并同时设置对照组。不同的损伤模型,应设置相应的对照组。慢性溃疡模型应先造模,手术次日再分组。受试样品给予时间一般为30天,必要时可以延长至45天。
1.4 胃粘膜损伤模型
1.4.1 急性胃粘膜损伤酒精模型
1.4.1.1 实验动物:选用Wistar或SD健康大鼠,单一性别。
1.4.1.2 实验器材及试剂:解剖器械,游标卡尺,酒精或醋酸,病理制片系统,生物显微镜等。
1.4.1.3 实验方法:动物随机分对照组、模型组和样品三个剂量组剂量组灌胃样品30天后,全部动物严格禁食24小时(不禁水),亦禁止给予受试物除空白对照外,所有试验组动物给予无水乙醇1小时后处死动物,暴露完整胃,结扎幽门灌注适量10%甲醛溶液,固定20min,然后沿胃大弯剪开,洗净胃内容物,展开胃粘膜,在体视解剖显微镜下或肉眼下用游标卡尺测量出血点或出血带长度和宽度。因宽度代表损伤的严重性远较长度大,故双倍积分。评分标准表。
表1 急性酒精损伤肉眼观评分标准
损伤程度 1分 2分 3分 4分 出血点 1个 - - - 出血带长度 15mm 6-10mm 10-15mm 15mm 出血带宽度 12mm 2mm 总积分 = 出血点分值+长度分值+(宽度分值(2)
观察指标:各实验组胃粘膜损伤程度以损伤发生率(%)损伤积分指数和损伤抑制率表示。损伤发生率(%)= 某组出现出血或溃疡的大鼠数量/该组大鼠数量×100%;损伤积分指数 = 组损伤评分总和/组动物数量;损伤抑制率(%)= (A-B) /A(100%(A、B分别为模型组与试验组的损伤积分)病理组织学观察及评分:大体完毕,将每只动物胃损伤最严重的部位切下固定于10%甲醛溶液,常规制片,HE染色,镜下观察注意选择胃粘膜正横切面,包括全层的区域观察。评方法:以充血、出血、细胞变性在整个上皮层的累及程度分5级。充血权重为1,出血权重为2,上皮细胞变性坏死权重为3,评分标准及病变总积分公式表2 急性损伤镜下评分标准
病变 1分 2分 3分 4分 5分 充血 < 1/5 1/5 2/5 2/5 - 3/5 3/5 - 4/5 上皮全层 出血 < 1/5 1/5 2/5 2/5 - 3/5 3/5 - 4/5 上皮全层 上皮细胞变性坏死 < 1/5 1/5 2/5 2/5 - 3/5 3/5 - 4/5 上皮全层 病变总积分 = 充血积分+出血积分(2+上皮细胞变性坏死积分(3 1.4.2急性胃粘膜损伤消炎痛模型
1.4.2.1 实验动物:选用Wistar或SD健康大鼠,单一性别。
1.4.2.2 实验器材及试剂:解剖器械或游标卡尺,病理制片系统;消炎痛,甲醛等。
1.4.2.3 实验方法:动物随机分对照组、模型组和样品三个剂量组,灌胃给予动物受试物,禁食不禁水24小时,模型组和剂量组给予消炎痛40mg/kg一次性腹腔注射。5小时后处死动物,剖腹将胃取出,结扎幽门和贲门,从十二指肠与幽门部结合处注入10%甲醛溶液5 ml,固定20后,沿胃大弯剪开,洗净胃内容物,展开胃粘膜,用纸吸干,观察胃粘膜损伤程度。用游标卡尺测量胃出血或溃疡的最大长及宽度,以出血或溃疡的最大长宽径作为损伤指标评分
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