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单细胞凝胶电泳检测技术.doc

单细胞凝胶电泳检测技术 摘要: 单细胞凝胶电泳技术又称彗星实验,是一种在单细胞水平上检测DNA损伤与修复的方法,具有快速、简便、价廉的优点。近年来越来越多的应用于遗传毒理学、生物和环境检测、肿瘤学的研究,本文就这些方面进行了综述。 关键词: 单细胞 电泳 DNA损伤与修复 单细胞凝胶电泳(single cell electrophoresis assay, SCGE)又称彗星试验(comet assay),是一种在单细胞水平上检测DNA损伤与修复的方法,由Ostling等于1984年首次提出,并利用该技术在中性条件下检测γ射线引起的DNA双链断裂。1988年Singh等建立了碱性单细胞凝胶电泳技术。1997年,Santos等首次将SCGE技术与DNA荧光原位杂交技术(fluorescence in situ hybridization, FISH)结合起来,为SCGE技术的应用开辟了新的途径。2001年, Nadin等建立了SCGE银染法,进一步提高了损伤DNA分析的灵敏度[1]。 SCGE 技术原理及方法 1.1 原理 在中性条件下,DNA双链不打开,只有DNA双链断裂时,才有DNA断片进入凝胶中迁移;在强碱条件下,DNA双链被打开,释放出断裂的DNA片段,电泳时,带负电荷的DNA移向正极,形成“彗星”状影像,DNA损伤越多,进入尾部的DNA碎片越多。尾长在辐射高剂量时达到饱和不再增加,而尾矩则与辐射量呈线性相关。因此,在尾长、密度、面积、尾矩等各项分析指标中,尾矩能更精确地测定DNA损伤。[2] 1.2 实验方法 首先制备细胞悬液,并用PBS调整细胞浓度为106~107个/ml,细胞溶解后再进行DNA损伤的诱导处理。 1.2.1 制片 有3种类型: (1) “三明治”凝胶,第1层为100~110μl 10.5%的NMA,第2层为合细胞悬液的LMP75μl,第3层仍为LMP75μl。 (2)双层凝胶,即不铺第3层胶; (3)单层凝胶,为改善其易与玻片分离的特点,可在玻片上制一凹槽进行单层灌胶[3]。经实验发现,一层胶法的效果不好,胶太薄容易漂浮;三层胶虽然解决了脱落漂浮的问题,但会影响观察的效果;而二层胶法既能使胶面较好的附着,又能使细胞尽可能多的处于同一平面,染色效果更好[4] 1.2.2 细胞裂解 目的是去除细胞浆,只留核中的DNA,裂解时间多为1小时。为了避免脱胶,裂解液在使用前需预冷,同时裂解液中要加入1%DMSO为减少裂解中自由基对DNA的额外损伤。在有的实验中还需要加入蛋白酶K,以清除蛋白质残基,避免DNA修复酶的作用[5] 1.2.3 解旋 裂解后在碱性溶液(1 m mol/L Na2EDTA,300 m mol/L NAOH p H13)中使DNA双链打开,时间约为20~60分钟。 1.2.4 电泳 一般在低电压(0.5~5V/cm)和短时间(20~30min)内进行。电压过高或电泳时间过长,彗星细胞拖尾以致彗星消失,而非彗星细胞也会泳出尾部形成假阳性结果;反之,电压过低或时间过短,DNA断片不易泳出,受损细胞无拖尾而造成假阴性结果[5] 1.2.5 阅片 在玻片上滴加溴乙锭、DAPI(根据实验的不同,采用不同的浓度)等,加盖盖玻片,即可在荧光显微镜下观察。 上述过程均应在黄光或暗室中操作,避免引起额外的DNA损伤。 1.2.6 实验结果分析 在荧光显微镜下放大200倍或400倍进行图象观察,观察指标有尾长即DNA迁移的长度,在低损伤剂量范围内与DNA损伤呈线性关系;尾矩即尾长与尾部DNA百分含量之乘积,在高损伤剂量下与损伤程度呈线性关系;尾惯量是与每个尾块的面积、平均荧光强度、在X轴上与彗星中心距离有关的综合性指标。彗星图象分析方法有:目镜测微尺直接测量,显微照相后用两脚规测量,经图象分析仪进行分析,或借助专门的图象分析软件如Lucia、Auto Gentox等彗星图象分析软件进行分析[6] 2. SCGE研究的类型 用于SCGE的生物种类很多,哺乳类有人、大鼠、小鼠、兔等;非哺乳类有鲫鱼、泥鳅、蚯蚓等。植物类的烟草;谷康定等还将此技术应用到真核单细胞微生物(四膜虫),且认为从方法上完全可以与动物原代和传代细胞互相替代[7]。细胞类型主要包括外周血淋巴细胞、肝细胞、脾细胞、胸腺细胞、骨髓细胞、肺泡细胞、鼻黏膜细胞、肿瘤细胞、睾丸细胞、神经细胞、精子及培养细胞、植物细胞等[8]。 用于SCAG的研究因子大致可分为3类,物理因素包括各种放射性元素、射线、冰冻、光照等;化学因素包括重金属及其化合物、过氧化物、臭氧、石棉、有机致癌物、有机染料、麻醉剂、抗癌药物、抗真菌剂等;生物因素包括细胞类型、细胞生长周期、细胞的D

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