大肠细菌的基因芯片鉴定.ppt

基因芯片扫描仪工作原理 基因芯片扫描仪工作流程 软件界面 按钮区 状态栏 图象显示区 控制区 大肠杆菌的检测结果 黄单胞菌的检测结果 试 剂 （1）20×SSC：在800ml水中溶解175.3g NaCl和88.2g柠檬酸钠，加入数滴HCl溶液调pH至7.0，加水定容至1000ml，分装后高压灭菌。 （2）杂交液：6μl 100％甲酰胺，0.24μl 10％SDS，1.8μl 20×SSC和4μl荧光标记的PCR扩增产物。 （3）洗液Ⅰ：2×SSC，0.2% SDS （4）洗液Ⅱ：0.2×SSC 实验三基因芯片鉴定大肠细菌 基因芯片： 是指将特定的DNA或寡聚核苷酸片段通过物理化学方法固定于玻璃、尼龙甚至塑料片上,使多基因分析可同时进行的一种装置。 基因芯片上可固定不同物种特定基因的探针，将从样品中提取并经PCR扩增和荧光标记的特异基因片段与基因芯片上的探针杂交，利用专门的光学仪器，能够检测到这些杂交信号（带有荧光标记的双链核酸），杂交信号出现在某物种的探针位点上，说明样品来自于该物种。 基因芯片上固定探针的方法 通过化学修饰可以使玻片成为表面富含氨基的基片。在中性溶液中，基片上的氨基所带的正电荷与核酸分子上的磷酸所带的负电荷相互作用，使核酸吸附在基片表面。加热和紫外照射可以增强固定效果，但紫外交联容易导致DNA断裂或DNA分子间形成干扰杂交的网状结构，所以一般还是采用加热固定。 本实验使用的基因芯片上固定有大肠杆菌HSP70基因和黄单胞菌HTPG基因的特异探针，可用于鉴定这两种细菌。 基因芯片制作和检测的原理 实验方案 本实验共分为四个部分： 一、大肠杆菌培养 二、提取大肠杆菌基因组DNA 三、PCR扩增其HSP70基因，电泳检测扩增产物 四、扩增产物与基因芯片杂交并检测杂交信号 第一部分 细菌培养 配制100ml LB液体培养基，蛋白胨1g，酵母提取物0.5g，氯化钠1g，加重蒸水100ml，用NaOH调pH至7.0，高压灭菌。 将大肠杆菌单菌落接种于LB培养基中，37℃恒温摇床上培养过夜，摇床转速约为280r/min。 第二部分提取纯化大肠杆菌基因组DNA 第二部分 实验步骤 1、取培养的菌液10ml，4000r/min离心10min，除去上清液。 2、加入1ml TE，使细菌沉淀充分悬浮。 3、加入0.2ml 10% SDS 溶液，再加入10μl 20 mg/ml 蛋白酶K， 37℃水浴中温育1h。(SDS溶解细胞膜上的脂类与蛋白质，因而溶解膜蛋白而破坏细胞膜，并解离细胞中的核蛋白，SDS 还能与蛋白质结合而沉淀；蛋白酶K能水解消化蛋白质，特别是与DNA结合的组蛋白。) 4、取出离心管，加入0.2ml 5mol/L NaCl 溶液，混匀后再加入0.2ml CTAB/NaCl 溶液，65℃水浴中温育20min。 5、加入与菌液等体积（1.6ml）的苯酚/氯仿/异戊醇混合液，用漩涡混合器混匀，4000r/min离心10min。注意吸取混合液前将混合液充分振荡混匀。 6、取上层水相至无菌离心管，再加入等体积的氯仿/异戊醇混合液，用移液器反复吹打混匀，4000r/min离心10min。 7、将上层水相转移到另一个无菌离心管中，加入2μl RNase A，37℃水浴中温育30min。 8、加入等体积的氯仿和异戊醇混合液，充分振荡， 抽提残留在水相中的苯酚。4000r/min离心10min。 9、将上清液移至新的离心管中。 10、加入上清液1/10体积的3mol/L NaAc溶液，以及上清液2倍体积的无水乙醇，颠倒混匀以沉淀DNA。室温下静置10min，DNA形成白色（或淡黄色）絮状沉淀。 11、用移液器轻轻吸住白色絮状沉淀，将其转移到装 有适量75%乙醇的1.5ml离心管中。上下颠倒漂洗，洗去杂质。7500r/min离心5min。 12、去上清液，沉淀干燥后溶解于100μl TE中。 取10μl提取的基因组DNA溶液加1.99ml水稀释后测量OD260，蒸馏水作为空白，计算DNA产量（1 OD260＝50μg DNA/ml）。 -20℃贮存其余基因组DNA，待下一实验用作PCR反应的模板。 DNA产量测定 试 剂 1、TE：10mmol/L Tris·HCl，1mmol/L EDTA 2、CTAB（十六烷基三甲基溴化铵）/ NaCl：将4.1g NaCl溶解 于80ml水中，缓慢加入10g CTAB，定容至100ml。 3、苯酚/氯仿/异戊醇混合液：水饱和酚 : 氯仿 : 异戊醇 = 25 : 24 : 1（体积比）。 4、氯仿