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实验八 小鼠单细胞凝胶电泳.pptVIP

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实验八 小鼠单细胞凝胶电泳

——丁书茂 单细胞凝胶电泳技术(single cell gel electrophoresis, SCGE) ,也称彗星试验(comet assay) ,是Ostling O和Johanson KJ首次提出,后经Singh等进一步完善的一种在单个细胞水平上检测DNA损伤、交联和修复的方法。因其简单、灵敏、低耗、快速等优点而广泛应用于生物检测、遗传毒理、流行病学调查等诸多方面。 一、实验原理 DNA链多为磷酸复合物,在生理条件下DNA的多聚核酸链多呈阴离子状态,当外源性因素(如紫外照射)造成DNA链断裂时,负超螺旋结构变得松散,那么在电场作用下DNA就会以一定速率向正极移动。 在细胞裂解液作用下,细胞膜、核膜等结构受到破坏,胞内蛋白质、RNA及其它成分均扩散到溶液中,而核DNA由于分子量大而只能留在原位。 经碱处理和在碱性电解质的作用后,DNA解旋,损伤的DNA断链及其片段会被释放出来,而在电泳条件下, DNA片段可进入凝胶孔隙发生迁移。由于这些DNA分子量很小,所以在电泳过程中会离开核DNA向正极移动,形成彗星状的图像。 在一定条件下,DNA迁移距离和DNA含量分布与DNA损伤程度呈线性相关。随着DNA损伤程度加剧,断片数目增加,表现为尾部DNA含量增加,彗尾延长,荧光强度加强。 二、实验流程 采用碱性SCGE,其基本操作过程包括: 1.细胞制取 取处于对数生长期的Hela细胞,吹打为单细胞悬液,用PBS调节细胞密度为105-106 个/ml。 2.细胞染毒 染毒组:取1ml细胞悬液加入10-3 M H2O2 溶液50μl ,混匀,37℃ 水浴30min; 阴性对照组:取1ml细胞悬液加入50μl PBS缓冲液,同等条件下水浴30min。 3.制片 第一层胶:在完全磨毛的载玻片上铺180μL质量分数为 1%的正常熔点琼脂糖(NMA),室温固化10min; 可将玻片用吹风机稍微加热,以延缓琼脂糖凝固。 第二层胶:取50μL 质量分数为0.8%的低熔点琼脂糖(LMA)和30μL的细胞悬液,混匀后滴加于第一层胶上,加该盖片使其均匀铺开,4℃凝固10min; 第三层胶:移开盖片,滴加100μL质量分数为0.5%的LMA于第二层胶上,加盖片, 4℃凝固10min。 4. 裂解 将制好的凝胶放入冷的裂解液中,4℃下裂解2小时; 裂解液使用时新配(铺完第二层胶后即可配制) 90ml lysis solution 10ml DMSO 1ml Triton-X100 5. 解旋 从裂解液中将载玻片取出,在蒸馏水中洗去过多盐,晾干。 将新配制的电泳缓冲液倒入电泳槽中,约覆过载玻片0.25cm,盖上盖子,在高pH电泳缓冲液中放置20 min以便DNA解螺旋。 6. 电泳 室温下调节缓冲液液面高低,于20V,200mA下电泳20min。 7. 中和 将凝胶浸入0.4M Tris缓冲液(pH7.5)中,浸洗 30min。 8. 染色观察 用20μg/L的吖啶橙染色3-5min,用双蒸水洗掉表面的染料,24小时内在荧光显微镜下观察。 三 结果观察 四 注意事项 实验操作均在红光或暗处条件下进行,以避免造成DNA的额外损伤。 关键步骤是铺胶,尤其是第一层胶,一定要平整,均匀。若有气泡,用下一层胶填平。 配制裂解液时,DMSO为致癌剂,注意安全。用去尖的枪头取Triton-X100 五 思考题 试分析三层胶浓度不同的原因。 试分析影响单细胞凝胶电泳实验结果的因素。 * 实验十七 单细胞凝胶电泳技术 ——丁书茂 单细胞凝胶电泳技术

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