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10 ReidMs,¨1n0DW,HoffmanNE,etal stimulusin Pl¨tGrowth
l-aminocyelopropane—l-cadxvxylicacid(ACC)一11letransmittedpouinatedflowers?JRegal,
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11 WhiteheadCS,ⅢinoDW,ReidMSIdentificati∞ofthe acid(ACC),inSclenfiaHorLic,
ethyleneprecursor,1-amonoeyclopmpane—l-carboxylicplooen
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and
12 DJ cdomtionin flowersemasculationbv ActaHortic,1989,261:145~150
WolteringLip Cymbidiumby hp-producedethylene
13 EJ betweenthedifferentflower enmsculatinn-inducedF,enef43encein flowers
WolteringInterrelationship partsduring Cymbidium
102l一1029
14 FJ translocationof acidand coordinatessenescenceinemasculatedCymbidiunaflowersP1日IIt
Wolteri“gIntemrgan l-aminocyclopmpane-1·carboxylicethylene
Pbysid,1990b,92:837~845
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ZhangXS,()|NeinSD.Ova,Tgar嘣叩h矿edevelopmentcoordinately陀gdmedfollowing
4】8
高压冷冻技术在植物分泌结构研究上的应用
吴 鸿
(西北大学生物系)
摘要利用高压冷冻和冷冻替代技术对欧洲赤松(P/rms靴哪而)茎皮层成熟树脂道上皮细胞的超微结构进行研
究,揭示出一种全新的树脂分泌方式。其分泌过程为:一些含有水解酶的高尔基小泡,转移至质膜周围并释放水解
酶,从而将质膜溶解形成分泌通道,树脂滴由此迅速转移至质膜外,然而,通过高尔基小泡相互融合形成新膜片段
的方式来修补破损的质膜。
关键词 欧洲赤松树脂道和树脂分泌高压冷冻和冷冻替代
1前言
松科植物普遍具有树脂道,其分泌的树脂为重要的医药和化工原料,关于树脂道的研究国内外已有大量
物质,然后内质网与质膜融合并将树脂分泌至质膜外(2)通过质膜内褶包裹树脂滴,然后质膜内褶与质膜分
离,将树脂分泌至质膜外。
上述理论完全是从建立在化学固定和脱水基础上的传统电镜技术研究结果推测而来。由于化学固定剂作
用时间相当慢(几秒到几分钟),加之化学固定剂与生物结构的交联具有一定选择性,因此不但不能使细胞内所
有结构得以充分固定,而且还会引起细胞成分的转移和损失,从而使样品形成各种假象f5-5。本文利用高压冷冻
和冷冻替代技术对欧洲赤松成熟树脂道分泌细胞超微结构进行研究,此方法与传统的化学制备过程相比,能更
好地保存细胞的超微结构,使其更近于自然状态[10J。研究结果显示出一种全新的树脂分泌方式。
r
2材料和方法
2.1植物组织
茎。
2.2高压冷冻
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