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蛋白质样品的制备 主讲:胡水旺 广东省蛋白质组学重点实验室 2011年10月25日 没有蛋白质就没有生命 蛋白质组学的发展 蛋白质组学(Proteomics) :是通过大规模研究蛋白质的表达水平的变化、翻译后修饰、蛋白质与蛋白质之间的相互作用,以获取蛋白质水平上疾病变化、细胞进程及蛋白质网络相互作用的整体综合信息的科学研究。 蛋白质组学常用的两大技术平台 为什么进行蛋白质样品制备? 1.混合物中排除非蛋白成分(多糖、脂肪、酚类)的影响。 2.双向电泳的分辨率不够高(1000-5000),需要通过制备样品来提高低丰度蛋白的含量。 3.样本时各种细胞或组织的混杂,而且性状不一。如肿瘤样品中混有血管和基质细胞。 蛋白质样品制备的原则 6.破坏蛋白质与其他生物大分子的相互作用; 7.有的研究中必须保持蛋白质的活性; 8.通过超速冷冻离心等方法清除所有的非蛋白杂质(核酸、脂肪、色素等); 9.制备样品的裂解液应该新鲜,不可反复冻融已经制备好的蛋白样品。 蛋白样品制备流程 1.组织或者细胞破碎; 2.分离或沉淀蛋白质; 3.纯化蛋白质或去除杂质。 一.组织或者细胞破碎 破碎方法的选择取决于样品的类型: 1.整体样品:个体小的物种(微生物); 2.组织样品:需要有选择的采样; 3.细胞样品:贴壁细胞、悬浮细胞、原代培养的细胞等; 4.可溶性样品:血清、尿液、脑脊液、细胞或组织的水溶性提取物 1.整体样品 2.组织样品 3.细胞样品 4.可溶性样品 温和的裂解方法 常用于组成比较简单的样品如细胞、亚细胞器等。 1.渗透裂解法; 2.冻融裂解法; 3.去污剂裂解法; 4.酶裂解法。 1.渗透裂解法 2.冻融裂解法 3.去污剂裂解法 4.酶裂解法 剧烈的破碎方法 常用于难破碎的细胞(如固体组织中的细胞、有坚硬细胞壁的细胞)。 1.超声波裂解法; 2.弗氏压碎器法; 3.研磨法; 4.机械匀浆法; 5.玻璃珠匀浆法。 1.超声波裂解法 常用于细胞样品; 避免产生气泡,保持低温。 2.弗氏压碎器法 3.研磨法 4.机械匀浆法 适合于匀浆固体组织; 分为玻璃匀浆器和电动匀浆器 5.玻璃珠匀浆法 剧烈震荡的玻璃珠打破细胞壁 适合细胞悬液或微生物 蛋白酶活性抑制剂的使用 加入蛋白酶抑制剂作用:防止修饰、减少降解。 1.变性剂(尿素和硫脲); 2.苯甲基磺酰氟(PMSF ) :不可逆抑制剂,抑制丝氨酸和部分半胱氨酸蛋白酶; 3.AEBSF:不可逆抑制剂,和PMSF类似; 4.金属蛋白酶抑制剂:可逆抑制剂,如EDTA、EGTA,抑制金属蛋白酶; 5.肽蛋白酶抑制剂:可逆抑制剂,如亮抑肽酶、胃蛋白酶抑制剂; 6.甲苯磺酰赖氨酰氯甲酮(TLCK):不可逆抑制剂,抑制许多丝氨酸和半胱氨酸蛋白酶; 7.Benzamidine:抑制丝氨酸蛋白酶。 二.分离和提取蛋白质 1.硫酸铵沉淀(盐析); 2.三氯乙酸沉淀(TCA沉淀); 3.丙酮沉淀; 4.在丙酮中用三氯乙酸沉淀; 5.用苯酚提取,随后在甲醇中用醋酸铵沉淀。 1.硫酸铵沉淀(盐析) 步骤:高盐溶液能使蛋白质聚合。缓慢加入硫酸铵至饱和,搅拌后通过离心沉淀蛋白。 适用于样品的预分离或富集蛋白。 缺点:残留的硫酸铵会干扰IEF,需要去除。 2.三氯乙酸沉淀(TCA沉淀) 原理:三氯乙酸浓度达到10%-20%时,蛋白质可以在冰上沉淀。 缺点:蛋白质沉淀后难溶解,残留的TCA需要用丙酮或者乙醇清洗沉淀。 3.丙酮沉淀 步骤:在提取物中加入3倍体积的冰丙酮,使蛋白在-20℃沉淀至少2小时,在离心沉淀蛋白质。 优点:残留的丙酮可以空气干燥或冻干除去。 4.在丙酮中用三氯乙酸沉淀 步骤:10%TCA在丙酮中重悬裂解的样品溶液(20mM DTT) ,只属于在-20 ℃沉淀45分钟,通过离心沉淀蛋白。并用含20mM DTT的冰丙酮清洗沉淀。 缺点:存在沉淀难溶解问题 5.用苯酚提取,随后在甲醇中用醋酸铵沉淀 步骤:用苯酚提取,随后在甲醇中用醋酸铵沉淀,然后用丙酮清洗。 适用于提取浓度低的样品如植物、尿液。 缺点:沉淀不容易溶解。 蛋白质裂解技术 适宜裂解剂能够提高双向电泳的分离效果。 裂解剂分为三个成分 1.离液剂:破坏氢键等次级键,使肽链伸展,暴露疏水中心。如尿素或者硫脲, ; 2.表面活性剂:破坏疏水作用。如SDS(阴离子去污剂)、CHAPS 、SB3-10(两性离子去污剂)、Triton X-100 和NP-40(非离子去污剂); 3.还原剂:断裂二硫键。如巯基乙醇、二硫苏糖醇、三丁基膦。 裂解液的组成 1.脲+一种或者几种去污剂+还原剂+两性电解质 2.裂解离心前需要室温平衡 样品的预分级 1.提高低丰度蛋白的上样量和检测。 2.可
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