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1. 什么是western blot? 答:WB又称免疫印记法.是将生物大分子物质通过不同途径转移到固相载体的过程。 2. western blot 有什么优点? 答:灵敏,可达ng级,用Ecl显色法理论上可达pg 级。方便,特异性高。 3. western blot 的具体步骤是什么? 答:一. 制样(以提动物组织总蛋白为例), 1) 组织洗涤后加入3 倍体积PBS,0℃研磨。 2) 加入5×STOP buffer 3) 180W, 6mins,0℃超声波破碎 4) 5000rpm,5mins 离心,取上清。 5) 加入REB(9.5ml加入0.5ml),溴酚蓝(9.5ml加入0.5ml) 6) 煮沸,10min 7) 分装,于-20℃保存,用时取出,直接溶解上样。 二. 电泳(SDS) 建议欲检测抗原10-30kd, 用15%胶;30-100kd, 用10%胶;100-200kd,用7.5 %胶。 1)配胶(one piece)A.分离胶。单位:ml。Total: 8ml 7.5% 10% 15% 2×Sep. buffer 4 4 4 30% Gel.sol 2.0 2.7 4 ddH2O 1.9 1.2 0 TEMED 8ul 8ul 8ul 10%APS 80ul 80ul 80ul B. 浓缩胶。单位:ml。Total: 3.5ml 3% 2×Stacking. buffer 1.7 30% Gel.sol 0.35 ddH2O 1.4 TEMED 5ul 10%APS 50ul 2)点样。上样蛋白量不应超过30ug/mm2. (载荷面即:如果你的胶槽是5mm×1mm, 则 载荷面为:1mm×5mm=5mm2), 3)电泳。开始用80V电压,但是当溴酚蓝至分离胶时,用100-120V电压。 4)转移(一块胶)。 A.半干法。 a. 取六张滤纸(Bio-Rad,1mm),三张做上层滤纸,三张做下层。其中, 上层滤纸一定要比较干净,无污染。用前都用Transfer buffer 浸泡至少 五分钟。 b. 准备硝酸纤维素薄膜,用时先用甲醇浸泡1-3min.倒掉后,再用Transfer buffer 浸泡。 c. 做三明治。阳极上铺三张下层滤纸,再浸泡过的膜,再铺胶,然后铺三 实验方法互助区——蛋白区 张上层滤纸,最后铺上三张上层滤纸,盖上阴极。注意每层之间不能有 气泡。膜上用铅笔画出胶的边缘。标上下。 d. 转移,0.8mA/cm2-3mA/cm2. 经验是:100kd-200kd,用2mA/cm2,2hrs; 30-100kd用1.0-2.0mA/cm2,40mins-1.5h;10kd-30kd%用0.5-0.8mA/cm2, 15mins-40mins. B.湿法。 a. 取四张滤纸,两张做上层滤纸,两张做下层。其中,上层滤纸一定要比较 干净,无污染。 b. 准备硝酸纤维素薄膜,用时先用甲醇浸泡1-3mins.倒掉后, 再用Transfer buffer 浸泡。 c. 做三明治。 e. 转移。抗原≥100kd, 先28V转移1h, 然后84V转移14-16h, ≤100kd, 则 63V转移4-16h. 三封闭:5%牛奶4℃封闭过夜,或RT 1hr. 四第一步反应:5%牛奶或2%BSA稀释抗体(称一抗),稀释比例按抗体说明,室温 孵育1hr, 五洗涤:TBST 洗5 mins 3-5 次。 六第二步反应:将膜跟5%牛奶或2%BSA稀释的2 抗一起孵育,室温1hr。 七洗涤:TBST 洗5 mins 3-5 次。 八显色: 4. western blot 所需buffer 的配方是什么? 答:主要的buffer有: 1) 2×Separation buffer (PH: 8.8) 0.75M TRIS.HCl 90.825g 0.2% SDS 10ml 20% SDS Total: 1000ml 2) 30% gel Solution 0.8% kis-aciylamide 0.8g 29.2% aciylamide 29.2g Total: 100ml 3)10% APS: 0.1g 溶于1.0ml ddH2O. 4) 2×Stacking buffer(PH: 6.8) 0.2M Tris 15.14g 0.2% SDS 1g or 5ml 20% SDS Total: 500ml 5) 10×Running buffer(PH: 8.3) 250mM Tris 60.55g 1.9M Glycine 285.27g 1% SDS 20g or 100ml 20% SDS Total: 2 liters 6) Semi-dry transfer buffer(PH:8.3): 48mM Tris 5

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