动脉血压综合实验技术方案.ppt

动脉血压综合实验 目的和原理 动脉血压的形成和稳定取决于心脏泵血、外周阻力和循环血量三个方面。 本实验通过动脉插管法直接记录动脉血压，观察神经、体液因素对血压的调节，抗高血压药对麻醉动物的降压作用。 通过急性失血性休克动物模型的复制，观察休克前后动物血压和呼吸的变化规律。 实验对象 家兔 步骤和方法 1. 家兔的捉拿 一手抓住颈背部皮肤，另一手托住臀部，使兔呈坐位姿势。抓的面积越大，其承重点越分散，注意不要抓耳朵。 步骤和方法 2. 家兔的称重 将家兔放在实验室最后面的婴儿秤上称重 步骤和方法 3. 家兔的麻醉 3.1 麻醉药物：20%乌拉坦 3.2 给药量：5ml/Kg 3.3 给药途径：家兔耳缘静脉注射 注射时一位同学要将家兔扶好，固定，防止挣扎。先将家兔耳缘的毛拔除，用手指压迫或用动脉夹夹住耳根部，待血管充分充盈后，取抽好药液的注射器，从静脉末端刺入血管。注射器针孔应朝上，针孔与注射器有刻度的一面在同一平面上。 步骤和方法 3. 家兔的麻醉 如确定针头在血管内（如有血液进入注射器或回抽有血），即可松开动脉夹。注射药液时，如推注通畅无阻力，并见到血液被药液冲走，表明药液注入静脉；入耳壳肿胀、发白，则表明注射在皮下，注射完毕用棉球按住注射部位，将针头拔出，并继续按压片刻，以防出血。 步骤和方法 3. 家兔的麻醉 3.4 静脉注射麻醉药时，开始的速度可快些，即先 给予总量的1/3， 以求动物能快速、顺利地度过兴奋期。后2/3剂量的给入速度宜慢，且边注射边观察动物生命体征的变化.如果实验时间过长,动物舒醒挣扎，可适量补充麻醉药（追加1/5-1/3）。 3.5 麻醉效果的判断 肢体肌肉松弛，呼吸节律呈深而慢的改变，角膜反射迟钝或消失。 步骤和方法 注意事项 一定要注意保护耳缘静脉，注射时要从耳尖部进针。 步骤和方法 4. 家兔的固定 先把固定带系4个活扣，分别套在家兔的四肢上，前肢套在腕关节以上，后肢套在踝关节以上，抽紧固定带的长头。 然后把捆绑两前肢的固定带固定在兔台两侧底部的挂钩上； 再把捆绑两后肢的固定带固定在兔台两侧底部的挂钩上。 最后用棉线钩住家兔门齿固定于兔台的铁柱上，使家兔的颈部保持平直（做到固定牢、体位正），便于手术操作。 步骤和方法 5. 手术操作 5.1 选择手术视野、剪毛： 在家兔下颌至锁骨处的范围内，紧贴动物颈部皮肤，小心地剪去动物毛（为避免伤及皮肤，可一手将皮肤绷平，另一手持剪刀平贴于皮肤逆着毛的朝向剪毛）。 步骤和方法 5.2 手术过程 (1) 在紧靠喉头下缘，沿颈部正中线作一长约5—7cm的皮肤切口，用止血钳分离皮下结缔组织，首先看到胸锁乳突肌。再向下分离，便露出胸骨甲状肌和紧贴于气管上的胸骨舌骨肌。 步骤和方法 5.2 手术过程 (2) 颈部神经血管分离术在颈部，神经与颈总动脉被结缔组织膜束在一起，形成血管神经束，位于气管外侧，其腹面被胸骨舌骨肌和胸骨甲状肌所覆盖。用止血钳分离上述肌肉之间的结缔组织，后用左手拇指和食指轻轻摄住分离的肌肉和皮肤，稍向外翻，即可将血管神经束翻于食指之上，然后用弯头止血钳分离颈总动脉外的结缔组织膜，将动脉分离约4cm 长，即可穿线备用。 步骤和方法 5.2 手术过程 (3) 3条粗细不同的神经：迷走神经最粗，呈 白色，一般位于外侧，易于识别；交感神 经较细，但较减压神经稍粗，略呈灰色，一般位于内侧；减压神经最细，呈白色，一般位于迷走和交感神经之间。 步骤和方法 5.3 动脉套管插入法 首先从耳缘静脉注入0.5%肝素0.5ml。 在分离出来的左侧颈总动脉下穿两根丝线 结扎远心端 在颈总动脉之近心端处（尽可能靠心端），用动脉夹将动脉夹住。 在紧靠结扎处的向心端用锐利的眼科剪在动脉上沿向心方向作一斜形切口。 步骤和方法 5.3 动脉套管插入法 将准备好的动脉套管由切口插入动脉内 用另一根丝线将动脉导管固定在动脉内 并将余线结扎于套管上的胶带上 注意：套管应与血管方向一致，且将套管放置稳妥，以防扭转或套管尖端刺破动脉管壁。 家兔颈部血管神经解剖位置 步骤和方法 观察项目 6.1 观察正常血压曲线： 正常血压曲线可以看到三级波。 一级波是由心室舒缩引起的血压波动 二级波是由呼吸运动所引起的波动 三级波与心血管中枢的紧张性有关 步骤和方法 观察项目 6.2 夹闭颈总动脉 用动脉夹夹闭颈总动脉15s，观察血压的变化。 步骤和方法 观察项目 6.3 电刺激迷走神经 待血压稳定后，用电刺激器的钩子钩住迷走神经，打开通道5，设定参数：刺激频率20－25ms，刺激15－20s，电压：6V。观察血压的变化。 步骤和方