食具消毒.doc

大肠菌检测：肠菌群MPN计数的检验程序见图1。10 倍系列稀释选择适宜 3 个连续稀释度的样品匀液，接种LST 肉汤管 6.1.4 用1 mL 无菌吸管或微量移液器吸取1:10 样品匀液1 mL，沿管壁缓缓注入9 mL 磷酸盐缓冲液或生理盐水的无菌试管中（注意吸管或吸头尖端不要触及稀释液面），振摇试管或换用1 支1 mL 无菌吸管反复吹打，使其混合均匀，制成1:100 的样品匀液。6.1.5 根据对样品污染状况的估计，按上述操作，依次制成十倍递增系列稀释样品匀液。每递增稀释1 次，换用1 支1 mL 无菌吸管或吸头。从制备样品匀液至样品接种完毕，全过程不得超过15 min。6.2 初发酵试验每个样品，选择3个适宜的连续稀释度的样品匀液（液体样品可以选择原液），每个稀释度接种3管月桂基硫酸盐胰蛋白胨（LST）肉汤，每管接种1mL（如接种量超过1 mL，则用双料LST肉汤），36℃±1 ℃培养24 h±2 h，观察倒管内是否有气泡产生，24 h±2 h产气者进行复发酵试验，如未产气则继续培养至48 h±2 h，产气者进行复发酵试验。未产气者为大肠菌群阴性。6.3 复发酵试验用接种环从产气的LST肉汤管中分别取培养物1环，移种于煌绿乳糖胆盐肉汤（BGLB）管中，36 ℃±1℃培养48 h±2 h，观察产气情况。产气者，计为大肠菌群阳性管。6.4 大肠菌群最可能数（MPN）的报告按6.3确证的大肠菌群LST阳性管数，检索MPN表（见附录B），报告每g（mL）样品中大肠菌群的MPN值。 饮食业餐饮具是控制肠道传染病发生和流行的重要环节之一饮具消毒是防止胃肠道传染病传播的重要措施标准食（饮）具消毒卫生标准 GB 14934-94适用于宾馆、饭店、餐厅、食堂等饮食企业的食（饮）具，也适用于个体摊点的食（饮）具。餐饮具感官指标.1　物理消毒（包括蒸汽、煮沸等热消毒）：食（饮）具必须表面光洁、无油渍、无水渍、无异味。.2　化学消毒：食（饮）具表面必须无泡沫、无洗消剂的味道，无不溶性附着物。　　理化指标　　　采用化学消毒的食（饮）具，必须用洁净水清洗，消除残留的药物。用含氯洗消剂消毒的食（饮）具表面残留量，应符合表1的要求。表1理化指标项 目 指 标 游离性余氯，mg/L 0.3 烷基（苯）磺酸钠，mg/100cm 0.1 3 细菌指标　　　采用物理或化学消毒的食（饮）具均必须达到表2的要求。　　　　　　　　　　　　　　　　　　表2细菌指标项 目指 标大肠菌群发酵法,个/100cm 3 纸片法,个/50cm不得检出致病菌不得检出注：发酵法与纸片法任何一法的检验结果均可作为判定依据。　采样与检验方法1　发酵法1.1　采样方法　　　食（饮）具抽检碗、盘、口杯，将2.0cm×2.5cm（5cm）灭菌滤纸片紧贴内面各10张（总面积50 cm2）、碟、匙、酒杯以每5件为1份，每件内面紧贴灭菌滤纸片各2张（总面积50 cm/份）,经1min，按序取置入50 mL灭菌盐水试管中，充分振荡后，制成原液。　　　筷：取每双的下段12 cm处约50 cm（l2cm×2cm×2cm），置入50 mL 灭菌盐水试管中，充分振荡20次，制成原液，1.2　检验方法　2　纸片法　　食（饮）具消毒采用专用的大肠菌群快速检验纸片。2.1　采样方法　　随机抽取消毒后准备使用的各类食具（碗、盘、杯等），取样量可根据大、中、小不同饮食行业,每次采样6～10件,每件贴纸片两张,每张纸片面积25cm（5cm×5cm）用无菌生理盐水湿润大肠菌群检测用纸片后，立即贴于食具内侧表面，30s后取下，置于无菌塑料袋内。　　　筷子以5只为一件样品，用毛细吸管吸取无菌生理盐水湿润纸片后，立即将筷子进口端（约5cm）抹拭纸片，每件样品抹拭两张，放入无菌塑料袋内。2.2　检验方法　　　将已采样的纸片置37培养16～18 h，若纸片保持紫蓝色不变为大肠菌群阴性，纸片变黄并在黄色背景上呈现红色斑点或片状红晕为阳性。7　食（饮）具消毒卫生管理规范7.1　食（具）消毒设施的卫生要求7.1.1　食（具）消毒间（室）必须建在清洁、卫生、水源充足,远离厕所，无有害气体、烟雾、灰沙和其他有毒有害品污染的地方。严格防止蚊、蝇、鼠及其他害虫的进入和隐匿。7.1.2　食（具）洗涤、消毒、清洗池及容器应采用无毒、光滑、便于清洗、消毒、防腐蚀的材料。7.1.3　消毒食（饮）具应有专门的存放拒，避免与其他杂物混放，并对存放柜定期进行消毒处理，保持其干燥，洁净。7.1.4　有条件的单位和个体摊贩,应配备食（饮）具消毒设备,并严格按操作规程使用。7.2　消毒方法与卫生要求7.2.1 　热力消毒包括煮沸、蒸汽、红外线