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免疫酶细胞化学
免疫酶细胞化学是免疫细胞化学(Immunocytochemistry,ICC)中最常用的方法之一,它是在抗原抗体特异反应存在的前提条件下,借助于酶细胞化学的手段,检测某种物质(抗原/抗体)在组织细胞内存在部位的一门新技术:即预先将抗体与酶连结,再使其与组织内特异抗原反应,经细胞化学染色后,于光镜或电子显微镜下观察分析的形态学研究方法。
40多年前,Coons及其同事利用荧光色素(FITC)标记抗体而开创的免疫荧光抗体技术,具有一定的灵敏性、特异性、操作简单等优点,但亦存在抗体用量大,标本不能长期保存、需较昂贵的荧光显微镜等问题。几乎在同一时期,电子显微镜在医学生物学领域中得到了广泛的应用。为克服荧光抗体法的不足、并能在超微结构水平定位抗原物质的存在部位,Nakane(1966)等成功地引入了酶代替荧光色素标记抗体,进行组织细胞内抗原或半抗原的定位,开辟了酶标抗体技术免疫酶细胞化学之路。
Sternberger(1970)等人在此基础上又作了改良,建立了非标记抗体酶法以及PAP法。酶标抗体法确立至今已经27个春秋,不断发展、成熟。各种新技术的引入,使新抗体相继问世,应运而生的抗体制造、经销商遍布世界各地,使ICC技术得到了更广泛的推广和应用,成为当今形态学研究领域中不可缺少的手段;同时也有为临床病理诊断、肿瘤性质的判定、预后的估测等提供重要依据,是临床实验室常规检查法之一。近年,伴随分子生物学、分子遗传学的惊人进步,ICC技术在基因表达产物的观察,细胞功能动态分析中,亦发挥着重要作用。在此,结合,笔者经验,介绍ICC染色中的主要程序:组织标本的固定、切片、染色原理及步骤、结果判定及一些进展、特殊应用等供读者参考。
第一节 固定和切片
一、固定
若想得到理想的ICC染色结果、正确地判断抗原物质在组织细胞内的位置,除需有良好酶和抗体外,保持组织细胞内抗原物质的不动性(Immobility)和免疫活性也是至关重要的。换言之,如果抗原物质在组织细胞间弥散、丢失或失去免疫活性,无论如何努力染色都是徒劳的,所以说固定是ICC染色中非常重要的一环。ICC与其它组织学技术不同,除要求保存良好的结构外,还需保存组织抗原的免疫活性。一般认为,新鲜组织能够最大限度地保存组织抗原的免疫活性,但结构较差,易出现抗原弥散丢失现象。Cumming(1980)报告,不固定的组织切片ICC染色时,环鸟苷酸含量丢失80%以上。固定的目的是使构成组织细胞成分的蛋白等物质不溶于水和有机溶剂,并迅速使组织细胞中各种酶降解、失活,防止组织自溶和抗原弥散,保持组织细胞的完整性和所要检测物质的抗原性。因此迅速充分固定是ICC染色成功的关键一步。用于ICC的固定剂种类较多,选择时应根据所要检测物质的抗原性质和切片方法以及所用抗体特征等做最佳筛选。制片及固定方法见第一章 ,下面介绍两种近年报道的新方法。
1.AMEX(Acetone Meth Enzoate Xylene )法 是改良的冰冻置换法(freeze substitution)的简称,主要用于石蜡包埋标本。Sato(1986)报告,该法具有同新鲜(未固定)组织冰冻切片同样的抗原保持性和石蜡切片的良好组织结构保存。其机制为:组织在丙酮中固定(脱水),组织细胞内水份逐渐被丙酮取代,继之,用苯甲酸酯取代组织内丙酮,经二甲苯置换后,石蜡包埋。组织在-20丙酮内过夜亦形成冰晶,所以原方法将组织先置4丙酮20~30min,再移入-20丙酮过夜。实际上组织在4丙酮内过夜亦可得到同样效果。如在该固定液内加入少量蛋白酶活性阻断剂,并采用低溶点石蜡包埋等,可获得更佳染色结果。
2.微波固定(Microwave fixation) 为近几年所注目的问题之一。该方法能保持良好的组织结构和抗原性,适于各种切片的酶组化、ICC以及免疫电镜等材料固定。其固定机理可能与微波(频率1000~3000MHz)具有被水分吸收的性质(通常所用的微波是频率2450MHz,波长12cm);生物材料含有大量水份,照射后,温度升高,分子运动加快,促进固定液向组织内渗透,加速与组织成分的反应,短时间内达到固定的效果等有关。经微波照射固定的组织,需置相同固定液中,继续固定2~6h,室温。
近年研究的专门固定用的微波炉已商品化,例如:Bio-Rad H2500型、日新EM·MWE-2等,该类微波炉能够准确地调节 照射时间和测定被照材料的瞬时温度。利用家庭微波炉代替时,应选用能以秒为单位调控的微波炉。实验材料不同,所需固定液的量、照射时间等各异,所以应在预实验的基础上,找出合适的固定液量、照射时间和温度。多数实验室的条件为:固定液5~10ml,照射10~30s,照射后固定液的温度≤50。C。其方法为:将实验标本置于微波炉旋转台
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