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医科大学机能学实验报告
实验日期:2015年6月24日
带教教师:
小组成员:(尼可刹米组)
专业班级:预防医学一大班
批阅人 成绩
呼吸调节、呼吸功能不全及治疗
一、实验目的
1、观察豚鼠的正常呼吸频率、幅度、膈肌放电、动脉血氧分压及呼吸运动的调节。
2、复制豚鼠哮喘模型,观察呼吸衰竭时的动物呼吸频率、幅度、动脉血氧分压及膈肌放电的变化;探讨呼吸衰竭的发生机制。
3、观察不同药物的治疗效果并分析其作用机制。
二、实验原理
呼吸为气体交换过程,完整的呼吸功能包括外呼吸、内呼吸和气体运输功能。呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。呼吸衰竭是指外呼吸功能严重障碍,导致PaO2降低或伴有PaCO2增高的病理过程。 诊断呼吸衰竭的血气标准:PaCO2低于60mmHg,伴有或不伴有PaCO2高于50mmHg。
根据PaCO2是否升高,可将呼吸衰竭分为I型,PaO260mmHg,PaCO2正常或降低;Ⅱ型,PaO260mmHg, PaCO250mmHg。
根据发病机制不同,分为通气性和换气性。 根据发病部位不同,分为中枢性和外周性。 根据发病缓急,分为急性和慢性呼吸衰竭。
外呼吸功能障病因与机制:通气障碍:a.阻塞性(气道狭窄或阻塞)b.限制性(肺泡扩张受限);换气障碍:a.弥散障碍b.通气/血流失调c.解剖分流↑。
三、实验仪器设备
Medlab生物信号采集处理系统、血气分析仪、豚鼠手术台、手术器械一套、呼吸换能器、动静脉留置针(22—24G),小动物气管插管、超声雾化器一套、银针
四、实验方法与步骤
(1)称重,麻醉,固定 动物称重、腹腔麻醉(25%乌拉坦5—6ml/kg),固定于手术台。
(2)颈总动脉穿刺及气管插管 分离颈总动脉放置留置针以备取血,颈部气管插管接呼吸换能器。
(3)记录膈肌放电 将两根银针插入豚鼠右侧肋间肌中,针柄与传导电极两红色支连接,黑色支夹于皮肤。
(4)记录正常各项生理指标 打开Medlab信号采集系统,记录正常呼吸频率、深度及膈肌放电等情况,取血测定血气指标(PaO2、PaCO2)。
(5)观察呼吸调节 分别吸入纯氮气和5%—10%CO2后观察呼吸运动的改变。
(6)复制急性哮喘性呼吸衰竭病理模型 吸入雾化组胺制作急性哮喘性呼吸衰竭病理模型,待豚鼠呼吸出现频率明显减慢、幅度降低、膈肌放电异常时,记录上述各项指标的变化,取血作血气分析。
(7)治疗 待血气分析结果为呼吸衰竭时,经豚鼠头静脉注射尼可刹米(0.1ml/100g)进行治疗,并在给药即刻、5min、10min、15min时分别取血作血气分析。
(8)分析结果 比较各组治疗效果,分析并讨论各药治疗的作用机制。
五、实验结果
(电子版实验结果粘贴)
正常
呼吸衰竭
给药后15min实验数据填入下表:
指
标
组
别 呼吸 膈肌放电 血气 频率(bpm) 幅度(ml) 幅度(mv) 持续时间(s) PaO2 PaCO2 正常 吸N2 吸CO2 呼衰 给药后15’ 正常 吸N2 吸CO2 呼衰 给药后15’ 正常 吸N2 吸CO2 呼衰 给药后15’ 正常 吸N2 吸CO2 呼衰 给药后15’ 正常 呼衰 治疗后5’ 10’ 15’ 正常 呼衰 治疗后5’ 10’ 15’
空白对照
85 76 70 83 75
0.55 0.57 3.37
1.55 1.87 212.89 192.17
437.89 290.68
180.95 12.36 3.38 7.06
10.29 10.36 82.73
28.02
66.47
66.42 84.80
43.51
57.10
38.79
42.17 41.84 沙丁胺醇 109 88 116 69 205 0,06 0.34 0.57 0.03 0.05 247.9 262.69 331.21
292.16 315.27 9.58 15.59 12.38
14.79 12.66 114.4
35.46 41.44
52.02 42.15 29.74 27.02
48.97 51.87
49.18 地塞米松 26 24 29 48 25 0.55 0.57 3.37 1
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