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五、常用的PCR改进技术(PCR应用) (一)RT-PCR (reverse transcription PCR) RT-PCR是一种快速、简便、敏感性极高的检测 RNA的方法。 其基本原理是在逆转录酶催化下,以mRNA为模板合成互补DNA(cDNA),再以此cDNA为模板进行PCR 反应,使低丰度的mRNA得以扩增放大,便于检测。 该方法的关键步骤是RNA的逆转录,因此要求RNA模板必须完整。常用的逆转录酶有:鸟类成髓细胞白血病毒(AMV)的逆转录酶和莫洛尼鼠白血病毒的逆转录酶。 图7-13 RT-PCR原理和过程示意图 (二)定量RT-PCR ——通过设立RNA竞争性参考标准和利用PCR技术来定量分析基因表达的一种最快速、敏感的方法。 它与RT-PCR的区别:设立了RNA竞争性参考标准(RNA-CRS)。 1、内源性基因模板标准的选择与应用。(1)选择 选择那些在组织中普遍表达,且表达量比较恒定的一类mRNA作为内源性基因模板标准。编码这些mRNA的基因都是一些保守性强的管家基因,如β-肌动蛋白等基因。 (2)应用:①将这些表达量恒定的mRN稀释成不同浓度,分别与样本中的目的mRNA混合后,在各自不同的引物引导下共同逆转录,共同进行PCR扩增。 ② 将待测模板的扩增产物与内标准的扩增产物比较,当两者产物量相等时,待测mRNA量即与内标准mRNA相应的稀释浓度相同,从而达到定量的目的。 由于引物不同和mRNA的序列差异,扩增效率有一定差异,经过成百万倍放大以后差异就更大了,因此选择这类mRNA作为内标时,只能对目的mRNA进行相对定量分析。 2、体外构建RNA-CRS (1)参考标准构建 为了对目的mRNA进行精确定量,人们在体外构建了多种RNA-CRS。这些人为的RNA-CRS与目的mRNA在序列、大小和二级结构上相同或高度相似,可对目的mRNA进行精确定量分析。 以重组人SCF(stem cell factor)为例,构建RNA竞争性参考标准(图7-14)。 (2)应用 用SCF RNA-CRS对人重组SCF(干细胞因子)进行了定量TR-PCR分析。①将SCF RNA-CRS稀释成不同浓度;②分别与等量待测总RNA混合;③在相同条件下,用相同引物进行逆转录,形成cDNA; ④用PCR技术对cDNA进行共同扩增(用荧光定量PCR仪和被荧光素标记的dNTP) ⑤用软件分析DNA片段的荧光信号强度/每次扩增。⑥绘制PCR动力学曲线,确定达到平台期的循环次数(假如为22次达到平台期) ⑦选择指数扩增期进行QRT-PCR(20次);⑧分析PCR结果:a、测定靶基因荧光信号和内标准荧光信号强度;以lg(校正内标准荧光信号/靶基因荧光信号)为纵坐标,[其中校正内标准荧光信号=(靶基因长度/内标准长度)×内标准荧光信号]以lg[RNA-CRS]拷贝数为横坐标(浓度)b、建立直线回归方程。c、绘制回归直线:回归直线与横轴的交点表示内标准和靶基因分子数之比为1∶1。即, 最初的靶基因分子数等于内标准分子数。 (三)实时荧光定量RT-PCR(real-time fluorescent quantitative PCR,FQ-PCR) 1.原理 (1)荧光染料(fluorescent dye, fluorochrome) 荧光基团通常有自己的单一光吸收峰,即能吸收某一特殊波长的光。荧光基团吸收激发光的能量后通常以三种方式释放出能量: ①光能; ②热能; ③转移给邻近的分子。 (2)荧光共振能量转移(fluorescence resonance energy transfer,FRET) 当某个荧光基团的发射光谱与另一荧光基团的吸收光谱发生重叠,且两个基团距离足够近时,能量可以从短波长(高能量)的荧光基团传递到长波长(低能量)的荧光基团,这个过程称为荧光共振能量转移。相当于将短波长荧光基团释放的荧光屏蔽(淬灭)。 (3)PCR扩增及其监测 荧光PCR独特之处是:在PCR过程中,能利用荧光染料释放的荧光信号变化直接反映PCR扩增产物数量的变化。由于荧光信号变量与扩增产物变量成正比,通过自动化仪器对荧光进行采集和分析,能够实现对PCR过程的实时监测,达到对原始模板定量分析的目的。 主要采用以下几种模式: ①仿溴乙锭着色检测, ②荧光标记引物 , ③荧光标记探针 : PCR体系中除常规扩增引物外,还需要针对扩增模板的特异性探针,探针结合的位置在引物对的中间。 A. 水解探针模式(hydrolysis probe) 采用双荧光标记探针(TaqmanTM 5-nuclease assay),利用Taq DNA聚合酶的5ˊ→3ˊ聚合酶活性及5ˊ→3ˊ外切酶活性,在链的延伸过程中实现链替换,并将被
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