实用ELISA教程课件.pptVIP

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Elisa 实用操作手册 给师弟科普ELISA基本步骤。与其写个文档,不如直接写帖子,反正工作量一样。我自己做ELISA也只是初学者,所以说得不对的地方,请大家多多指正。 ELISA有白底(上图,不可拆)和黑空板子(可拆,8个一排,12排)。用吸光度(一般是450nm的OD值)来检测,就只能用白底的板子。黑底的板子可以用Lumin读数。 第一步,拿到板子,还有封盖膜。 第二步:用100ul包被抗体,包被好板子之后,轻弹混匀。将封盖膜的白色撕去,用透明有粘性的膜,贴在板子上,把膜压紧(贴膜是为了防止液体挥发,所以一定要把每孔黏牢)。 室温孵育过夜。 注意事项: 1.如果一次只做一部分孔,贴膜可以剪刀剪开,只用一部分。保证膜可以把加液后的孔盖住就可以。 2.加样时候,一定要保证每孔加样量完全一样。避免因为操作原因,每孔液体量有区别。ELISA比较敏感,操作误差会导致最后读数有不小的差别。 3.加的样,保证样品加在孔底,不要粘在管壁上,减少孔与孔之间的差异。 第二天早上,来洗掉包被液。 注意事项: 1. ELISA用的所有液体系统,记得一定要预先调PH值到7.2-7.4之间,最好按照说明书都无菌过滤过。1XPBS的PH值在7.68左右,仍然需要加盐酸调酸一点。Trizma base配出来,PH在9.98,必须调PH!否则ELISA中抗原抗体根本不能正常结合。蛋白对于PH值极度敏感。 2. 无菌要求多高,现在不知道。建议无菌配好的液体放在4度冰箱保存。每次用之前,放在室温下至少15分钟。ELISA用的液体,室温的温度,效果比较好。 洗包被液的时候,直接把板子翻过来,弃掉液体。在厚厚的吸水纸上,用力拍打板子,力求把孔中的液体完全弃干净。 用WASH BUFFER洗涤三次。因为孔的最大容量是400UL,但是300UL基本就可以把孔覆盖满。所以,建议洗板子的时候,每孔加350ul左右。 注意事项: 1.每次洗涤的时候,尽量拍干孔中液体。这样洗涤得比较干净。 2. 孔中没有液体时候,动作一定要快!!!ELISA包被后的孔,绝对不能干掉!否则非常影响结果。 3.封闭。 用是1%BSA in 1XPBS. 无菌过滤,4度保存,用之前放在室温复温。 封闭液最好可以封闭全孔,所以每孔加300UL封闭液,室温1小时。 4. 弃掉封闭液,拍干。 洗涤三遍。步骤如前。 5. 加标准品和样品。 标准品储存浓度很高,而且蛋白很忌反复冻融。建议第一次使用时,分装。可以48孔一只,-80度冰箱保存,可以有效保存半年。4度保存,有效期是60天,而且浓度会衰减。 取16孔标准品的量。举例,我的标准品储存浓度是270ng/ml, 标准品分7个点,最高浓度是1000pg/ml,每孔100ul, 2倍递减,所以是1000, 500, 250, 125, 62.5 , 31.2, 15.6 pg/ml, 7个孔我需要0.2ng标准品。 做ELISA必须有复孔。所以,两排14个孔我需要0.4ng标准品, 1.5ul。 标准品稀释步骤: 取7个EP管,第1管放400ul缓冲液,第2到7管放200ul缓冲液。将1.5ul标准品加入到第一管中,200ul枪轻轻吹打混匀。从第1管中取200ul加入第2管中,吹打均匀。依次稀释。第7管有400ul液体,最后只用200ul。 标准品加样步骤: 从第1管中取100ul加到A1孔,再100ul加到A2复孔中。 第2到7孔,参考上述步骤。 第8孔,H1和H2加没有标准品的缓冲液,作为阴性对照。 样本加样: 血清或者细胞上清,解冻之后混匀,建议3000RPM离心10分钟,沉淀液体中的固体杂质。 按照顺序,每孔加100ul样本,记得做复孔。加样体积一定要一样,但是动作要快。样本还是一定要保证加到管底,不要粘附到管壁上。 标准品和样品,每孔100ul,室温孵育2小时。 6. 弃掉液体,拍干。洗涤3遍。 7. 加检测抗体(detection antibody,尾端有生物素biotin),每孔100ul(储存液也是放-80度,用之前解冻后加缓冲液混匀,稀释到工作浓度,缓冲液的PH值都已经调到7.2-7.4之间)。 室温孵育2小时。 备注:以上这些步骤没有要求避光。所以,每次加样之后,只要保证把贴膜都贴牢,防止液体蒸发和孔间干扰即可。 板子可以放在操作台上。 不过因为操作习惯,即使不避光的步骤,也可以把板子放在室温的抽屉里。 8.弃掉检测抗体液,拍干。 洗涤三遍。 9. 加Streptavidin-HRP(亲和素-辣根过氧化物酶),这个一直4度保存,使用的时候200倍稀释(96孔,9.6ML液体,加48ul的Streptavidin-HRP,9552ul的缓冲液)。 100ul每孔,室温,避光(这步开始要避光),孵育20分

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