实验二酵母蔗糖酶.pptVIP

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实验二、酵母蔗糖酶的提取和酶活测定 实验目的 学习提取酵母蔗糖酶和测定酶活力的方法; 学习提取生物活性大分子的方法。 实验材料 材料:活性干酵母粉、石英砂; 试剂:95%冰乙醇、DNS液、PBS(pH7.2)、 5%蔗糖溶液、1N NaOH溶液; 仪器:水浴锅、高速冷冻离心机、722型分光 光度计。 实验原理 蔗糖酶的提取过程和酶活的测定方法; 蛋白质等生物活性大分子的提取方法。(自学) 提取工艺和酶活测定 蔗糖酶 蔗糖酶的耐热温度为50度,45度以下可保持酶活不变;在pH3.0~8.0范围内均可保持较高的酶活; 蔗糖酶的活性中心有巯基,因此在提取时应防止其被氧化,或者加入还原剂(如Vc)保持酶活力; 酵母细胞存在两种蔗糖酶,一种在细胞壁中,一种在细胞质内,前者活力较高,分子量较大(约270KDa),后者活力较低,分子量约为135KDa,两种酶的底物专一性和动力学性质十分相似,因此,本实验未区分内酶与外酶。 提取工艺 1. 破碎酵母细胞的方法: 蔗糖酶分子量较大,一般采用研磨法彻底破碎细胞使其释放出来,但应注意研磨过程中保持低温防止酶失活; 或者采用自溶法(适当的酸度和温度下利用酵母菌自身的酶系破坏细胞壁),此方法较为温和,但是时间较长,需加入少量防腐剂,防止过程中外界细菌污染; 化学渗透法等较温和的非机械法。 原则:低温,处理时间短,防止酶失活。 2. 选择性热变性: 根据蔗糖酶的耐热性质,将热不稳定性杂蛋白变性除去, 而蔗糖酶保持活性仍在上清液中;该法简便易行。 原则:1、选择合适的温度和加热时间,防止目的物变性, 2、溶液的蛋白质浓度要合适,防止蔗糖酶与杂蛋白共沉淀。 3. 有机溶剂沉淀法: 根据蔗糖酶的分子量和亲水性,在溶液中加入一定量的无水乙醇溶 液,利用其脱水作用,破坏了蛋白质分子表面的水化膜,使蔗糖酶 聚集沉淀下来,而与其它杂质分开。一般采用分级沉淀法摸索目的 物沉淀的条件。 原则:1、注意在低温下操作,故无水乙醇要预冷; 2、边加乙醇边搅拌溶液,防止局部乙醇过浓,导致酶变性失活; 3、离心后应迅速将上清倒出,沉淀物用缓冲液溶解,避免酶与有 机溶剂长时间接触,防止其变性。 测定酶活的原理 蔗糖酶可作用于β-1,2糖苷键,将蔗糖水解为D-葡萄糖和D-果糖; Cu2+ 、 Zn2+ 、 Fe2+ 是其激活剂,Mn2+ 是其抑制剂。 葡萄糖和果糖具有还原性,在偏碱性条件下,可与3,5-二硝基水杨酸共热后生成棕红色物质,在一定浓度范围内,还原糖的量和反应液的颜色强度成正比例关系。 蔗糖酶的活力通过其水解生成的还原糖量来反映。 ? 提取酶注意事项 了解目的物的分子量、酸碱稳定性、热稳定性,选择合适的提取条件; 提取过程中采用缓冲液系统溶解酶,并可添加一些保护剂(如还原剂、金属螯合剂等); 提取过程一般保持低温、避免剧烈搅拌、强酸、强碱等变性的因素; 一般先选择分辨率低处理量大的方法(如萃取、沉淀、吸附)浓缩酶,再采用分辨率高的方法(如离子交换层析、亲和层析、超滤)精制; 通过酶活测定,调节提取条件。 生物活性大分子的提取方法 自学书P36-41 实验步骤 反复冻融法破碎酵母细胞 称取1g活性干酵母泥,0.2g石英砂,置于预冷的研钵中,研磨至粉状,加入5mLPBS(pH7.2),混合均匀,研磨5min ,-20度冷冻,再研磨5min; 离心获得粗酶液 吸取约4mL酵母细胞破碎液于离心管中,8000rpm 5min,保留上清液;——粗酶液 分离纯化获得纯酶液 吸取剩余的约2mL酵母细胞破碎液于离心管中,45度水浴10min,缓慢搅拌,迅速冰浴冷却, 12000rpm 5min,保留上清液;——选择性热变性除去杂蛋白 将上清液置于离心管中,加入等体积预冷的无水乙醇(乙醇终浓度约50%),-20度静置15~20min,12000rpm 5min,保留沉淀物;——有机溶剂沉淀法获得蔗糖酶 每管加入1mLPBS(pH7.2)于沉淀物中,轻轻搅拌促溶;——纯酶液 酶活测定 蔗糖酶将底物水解为还原糖 试剂 (均35度预热) 粗酶液组 纯酶液组 测定组1 对照组1 测定组2 对照组2 酶液(mL) 1.0 1.0 1.0 1.0 1N NaOH液(mL) - 0.5 - 0.5 5%蔗糖液(mL) 2.0 2.0 2.0 2.0 35度水浴10

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