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常温下深度血液稀释后家兔脑组织TNF—α生成量的变化
[摘要] 目的 即时监测深度血液稀释后家兔脑组织肿瘤坏死因子α(TNF-α)生成量的变化。 方法 健康成年家兔30只,随机分为5组(n=6),对照组(E组)不进行血液稀释;A、B组以6%羟乙基淀粉(130/0.4)行血液稀释,目标HCT分别为18%(A组)、12%(B组);C、D组以4%明胶溶液行血液稀释,目标血细胞比容(HCT)同A、B组。左颈内静脉穿刺置管,以备采取血样;左股动、静脉穿刺置管以行急性等容性血液稀释(ANH);右股动脉穿刺置管以备抽取血液样本及监测动脉压。股动脉放血,同时A、B组经股静脉约30 min输注等量6%羟乙基淀粉行ANH至目标HCT;C、D组经股静脉约30 min输注等量4%明胶溶液行ANH至目标HCT。于动、静脉穿刺置管后20 min(T0)及ANH后2(T1)、4(T2)、8 h(T3)时,分别采集右股动脉和左颈内静脉血样各0.4 ml,采用ELISA法测定脑组织TNF-α生成量。 结果 E组各时点脑组织TNF-α生成量比较,差异无统计学意义;A组血液稀释后4 h出现TNF-α浓度升高;B、C、D组血液稀释后2 h出现TNF-α浓度升高。 结论 以羟乙基淀粉及明胶溶液对家兔行深度ANH后,均出现脑组织TNF-α生成量逐渐升高;ANH目标HCT为18%时,明胶溶液组较羟乙基淀粉组早出现TNF-α生成量增加。
[关键词] 血液稀释;脑组织;肿瘤坏死因子
[中图分类号] R-33 [文献标识码] A [文章编号] 1674-4721(2013)09(b)-0005-03
脑缺氧后的炎症反应在脑损伤中起重要作用[1],可引起炎性因子表达,中性粒细胞、单核细胞浸润,并导致神经元细胞坏死、水肿及脑软化。肿瘤坏死因子α(tumor necrosis factor α,TNF-α)作为具有广泛生物学活性的细胞因子,近年来在脑缺氧损伤过程中的作用备受关注。颈静脉球与动脉血细胞因子含量的差值反映脑炎性因子的生成量,可作为反映脑炎症反应严重程度的指标[2]。适度的急性等容性血液稀释(acute normovolemic hemodilution,ANH)在一定程度上起到抗炎和脏器保护的作用,但极度ANH是否影响机体免疫系统,是否加重炎症反应仍有较大争议[3-5]。本实验通过监测不同时点脑组织生成TNF-α量,观察深度血液稀释下脑炎症反应的程度。
1 材料与方法
1.1 实验材料
健康成年家兔30只,体重2~2.5 kg,随机分为5组(n=6),对照组(E组)不进行血液稀释;其余4组以6%羟乙基淀粉(130/0.4)或4%明胶溶液行血液稀释,A、B两组以6%羟乙基淀粉(130/0.4)行血液稀释,目标HCT分别为18%(A组)、12%(B组);C、D两组以4%明胶溶液行血液稀释,目标HCT同A、B组。
1.2 血液稀释模型的制备
术前家兔禁食12 h,不禁水,以20%乌拉坦5 ml/kg静脉麻醉,行气切插管及机械通气,潮气量(VT)15 ml/kg、呼吸频率(RR)30/min、吸入氧浓度(FiO2)为40%,维持家兔肛温37℃左右。分离左颈内、外静脉分叉处,留置针逆向穿刺置管至颈静脉球部以上备抽取血液样本;左股动、静脉分离以行ANH;右股动脉穿刺置管以备抽取血液样本及监测动脉压。
穿刺置管结束后稳定30 min,自右股动脉、左颈静脉球各取血0.1 ml行血气分析,确定初始血细胞比容(HCT)值决定放血量。放血量计算公式:2×kg×Q×(HCT0-HCT1)/(HCT0+HCT1)。其中Q为每公斤体重所含体液毫升数,家兔为50 ml,HCT0为初始HCT,HCT1为目标HCT。按此公式并结合基础HCT、目标HCT行ANH,自左股动脉放血,同时经股静脉输入等容量的6%羟乙基淀粉或4%明胶溶液,过程约30 min。同时密切观察生命征,控制ABP及HR波动在基础值的10%左右。
于动脉、静脉穿刺置管后20 min(T0)及ANH完成后2(T1)、4(T2)、8 h(T3)分别自左颈静脉球部、右股动脉取血0.4 ml,立即离心(4500 r/min,20 min),取上清液于-20℃保存,以酶联免疫吸附测定方法(ELISA)检测TNF-α浓度。
1.3 数据处理
采用SPSS 13.0统计软件进行数据处理,计量以均数±标准差(x±s)表示,组内比较采用重复测量设计的方差分析,组间比较采用单因素方差分析,以P0.05为差异有统计学意义。
2 结果
2.1 各组各时点动、静脉血TNF-α的比较
各时点E组TNF-α浓度比较,差异无统计学意义(P0.05);A组T2~T3及B、
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