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实验 反相高效液相色谱法测定水产品中土霉素和四环素残留量 实验目的 了解反相高效液相色谱的组成与分离原理； 了解高效液相色谱仪的基本操作； 掌握HPLC定性、定量方法； 了解水产品样品的前处理方法。 实验原理 在反相键合相色谱法中使用的是非极性键合固定相。它是将全多孔(或薄壳)微粒硅胶载体，经酸化处理后与含烷基(C8、C18)或苯基的硅烷化试剂反应，生成表面具有烷基或苯基的非极性固定相。 反相色谱的分离机制有多种，但多倾向于吸附色谱的作用机制。吸附色谱的作用机制认为，溶质在固定相上的保留是疏溶剂作用的结果(即所谓的疏溶剂理论)。根据疏溶剂理论，当溶质分子进入极性流动相时，即占据流动相中相应的空间而排挤一部分溶剂分子；当溶质分子被流动相推动与固定相接触时，溶质分子的非极性部分(或非极性分子)会将附着在非极性固定相上的溶剂膜挤开，直接与非极性固定相上的烷基官能团相结合(吸附)形成缔合络合物，构成单分子吸附层，而极性部分暴露在溶剂中。这也就是说溶质分子和固定相之间的“结合”，是由于溶质和极性溶剂之间的斥力造成的，而不是非极性溶质和非极性固定相之间的微弱的非极性作用力的缘故。这种疏溶剂斥力作用中可逆的，当流动相极性减弱时，这种疏溶剂斥力下降，会发生解缔，并将溶质分子释放而被洗脱下来。所以，流动相的极性越强，缔合作用就越强。显然，烷基键合固定相对每种溶质分子缔合作用和解缔作用之差，就决定了溶质分子在色谱过程中的保留值。 仪器与试剂 HPLC色谱仪（DAD检测器）、分析天平（0.0001g）、均质器、固相萃取仪、高速离心机等。 乙腈：色谱级；土霉素、四环素：标准品；磷酸氢二钠、磷酸、高氯酸、甲醇、EDTA-2Na、正己烷：分析级；水：超纯水；微孔滤膜：0.45μm。 实验步骤 色谱条件 色谱柱：反相C18柱；检测器：PDA、检测波长355nm；柱温：37℃；流速：1.0mL/min；进样量：30μL；流动相：乙腈：磷酸二氢钠（0.01mol/L）=26：74。 标准溶液的配制 0.01mol/L磷酸二氢钠溶液：称取1.56g（准确至0.01g）磷酸二氢钠（NaH2PO4·2H2O）溶于蒸馏水中，定容至1000mL，以磷酸调pH至2.5，经微孔滤膜（0.45μm）过滤后备用。 土霉素、四环素标准溶液：分别称取土霉素、四环素各0.01g，分别用于0.01mol/L磷酸二氢钠溶液中，定容至100.0mL，此标准溶液每毫升含土霉素、四环素100μg。 土霉素、四环素标准使用溶液：移取上述标准溶液10.0mL，定容至100.0mL，得土霉素、四环素浓度分别为10μg/mL的标准使用溶液。以上述标准溶液配制系列标准使用浓度：0.05、0.10、0.20、0.25、0.50、1.0μg/mL。此标准使用溶液需现配现用。 样品处理 鱼去鳞、去皮沿背脊取肌肉；虾去头、去壳取可食肌肉部分；蟹、甲鱼等取可食部分；样品切为不大于0.5×0.5×0.5cm的小块后混匀。 称取5.000g±0.001g样品，置于50mL离心管中，加入0.5%高氯酸溶液10mL（水溶性蛋白含量高的样品，用1.0%高氯酸溶液），用均质器均质30s，于震荡器上振荡提取30min，以4000r/min离心10min，取上清液于50mL试管中，向离心管中的残渣再加入0.5%高氯酸溶液5mL，重复操作一次，合并上清液。加入1mL正己烷，振荡1min后，离心，除去正己烷相；再加入1mL正己烷，振荡1min后，离心，除去正己烷相。水相用ODS-C18柱（预先用5mL甲醇、2mL5.0%乙二胺四乙酸二钠溶液、5mL实验用水洗过）预处理，用10mL蒸馏水洗去杂质，以5mL甲醇洗脱，收集洗脱液，40℃水浴中氮气吹干，用甲醇定容至1.0mL，以微滤膜过滤，滤液备用。 测定 开机 按照正确开机方式，分别开启工作站、高效液相色谱仪和检测器，并联机，预热；用流动相冲洗系统和进样环，待基线稳定。 建立分析方法 先配置系统，empower节点中选择系统配置，建新项目和方法。 进样分析 按照浓度有低到高的顺序测定标准系列溶液，在相同的实验条件下分别分析标准溶液和样品溶液，进样量均为30μL。 关机 测定完毕后，用100%甲醇清洗色谱柱和进样环，按照操作步骤先关闭电脑后关高效液相设备，并清洗所用玻璃仪器。 结果处理 由土霉素、四环素的标准色谱图对土霉素、四环素进行定性分析。 根据土霉素、四环素的色谱峰面积绘制标准工作曲线。 有标准工作曲线和样品中土霉素、四环素的峰面积，计算滤液中的土霉素、四环素的浓度。 样品中土霉素、四环素的含量按下式计算： 式中：X—样品中抗生素含量，单位为毫克每千克（mg/kg）； c—样品溶液中抗生素含量，单位为微克每毫升（μg/mL）； m—样品质量，单位为克