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质粒DNA的提取和PCR技术剖析
质粒DNA的提取和PCR技术 质粒提取 基本原理 操作步骤 注意事项 实验室安全 基本原理 细菌质粒是一类双链、闭环的DNA,大小范围从1kb至200kb以上不等。各种质粒都是存在于细胞质中、独立于细胞染色体之外的自主复制的遗传成份.质粒已成为目前最常用的基因克隆的载体分子,碱裂解法是最常用的方法。 基本原理为:当菌体在NaOH和SDS溶液中裂解时,蛋白质与线性DNA发生变性,质粒释放到上清中。当加入中和液后,因为闭环的质粒DNA分子虽然氢键破坏但双链并不分离。能够迅速复性,呈溶解状态,离心时留在上清中;蛋白质与染色体DNA变性相互缠绕成大分子复合物而呈絮状被SDS覆盖,当加入溶液三后形成PDS被离心时可沉淀下来。 试剂准备 : 1. 溶液Ⅰ: 50mM葡萄糖 平衡渗透压,调节PH值,有利悬浮。 25mM Tris-HCl(pH 8.0) 调节PH值 10mM EDTA(pH 8.0)鏊和离子 抑制DNase活性 高压灭菌15min ,贮存于4℃ 2. 溶液Ⅱ:0.2N NaOH,1% SDS 裂解细菌,变性线性DNA 3. 溶液Ⅲ:醋酸钾(KAc)3M,pH 4.8 中和PH值,并与SDS作用沉淀 4.苯酚/氯仿/异戊醇(25:24:1)苯酚变性抽提蛋白,为tris-base平衡酚。氯仿防止苯酚与水互溶。异戊醇的作用是降低表面张力,可以减少泡沫 5.异丙醇,乙醇(无水乙醇、70%乙醇)沉淀质粒 6.TE:10mM Tris-HCl(pH 8.0),1mM EDTA(pH 8.0)。 RNase A:10mg/ml 操作步骤及注意事项 1挑取单菌落,接种于含有相应抗生素的LB培养基中,于37℃振荡培养14~18 h。-培养时间不能太长,否则细菌老化,代谢产物太多。影响质粒质量。 2取1.5ml培养物入微量离心管中,室温离心12000g×1min,弃上清,将离心管倒置,使液体尽可能流尽。3.将细菌沉淀重悬于100μl预冷的溶液Ⅰ中,剧烈振荡,使菌体分散混匀。4.加200μl新鲜配制的溶液Ⅱ,颠倒数次混匀(不要剧烈振荡),并将离心管放置于冰上2-3min,使细胞膜裂解,DNA变性。-放置时间不能太长。因为在碱性条件下基因组DNA会慢慢断裂 。混匀动作要轻柔,既保证细菌沉淀在试剂中充分扩散又要避免机械剪切已变性的质粒DNA和染色体基因组DNA 。 5.加入150μl预冷的溶液Ⅲ,将管温和颠倒数次混匀,见白色絮状沉淀,冰上放置3-5min。-中和溶液,此时质粒DNA复性,染色体和蛋白质不可逆变性,形成不可溶复合物,同时K+使SDS-蛋白复合物沉淀。6.12000g离心10min取上清,加入等体积的苯酚/氯仿/异戊醇,振荡混匀,4℃离心12000g10min。-抽提掉剩余蛋白。7.小心移出上清于一新微量离心管中,加入0.5~0.7倍体积的异丙醇,混匀,4℃离心12000g,10min。-可以用两倍体积的无水乙醇,室温放置2-5min 离心。不要沉淀太久8.1ml 75%乙醇洗涤沉淀1次,4℃离心,弃上清,将沉淀在室温下晾干。-不要太干,否则不易溶解。9.沉淀溶于20μl TE(含RNase A 20μg/ml),37℃水浴30min以降解RNA分子,-20℃保存备用。 10.琼脂糖电泳检测。检测,定量。 其它注意事项: 1。质粒质量: 首先实验菌种生长的好坏直接影响质粒DNA的提取,因此对存放时间较长的菌种需要事先加以活化。其次操作过程注意:避免基因组断裂,除净蛋白,盐离子清洗干净。 质粒数量:同量摇菌量中质粒量取决于质粒拷贝数。低拷贝数质粒可以通过添加氯霉素来增大拷贝数。 2。阳性菌破壁裂解比较困难,可以先用溶菌酶处理。 溶液二中NaOH不要暴露在空气中太久。可能会与空气中的CO2 与NaOH作用,减弱了其碱性。 3。琼脂糖电泳进行鉴定质粒DNA时 如果能看到三条带,这三条带以电泳速度的快慢而排序,分别是超螺旋、开环和复制中间体(即没有复制完全的两个质粒连在了一起),注意碱法抽提得到质粒样品中应不含线性DNA ,另外如果发现运动得较慢的带,可能是由于操作不慎污染的大肠杆菌基因组DNA的片断。 实验室安全: 1。培养细菌的容器用过后都要及时进行灭菌,细菌培养基上清不要随便丢弃,应存放在一起进行灭菌处理,以免污染环境。 2。吸取苯酚时应注意安全。苯酚腐蚀性很强。吸取氯仿 异戊醇时要在通风橱中进行,氯仿 可引起神经系统功能紊乱要引起肝脏损害 。异戊醇其蒸气或雾对眼睛、皮肤、粘膜和呼吸道有刺激作用 3。电泳时注意避免EB污染。 PCR技术 基本原理 反应动力学 使用步骤及注意事项 反应参数要素 PCR优化 PCR技术 聚合酶链反应
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