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‘我看到园子里很多战友求助关于树突状细胞的培养问题,倾情奉上我培养的方法,对新手朋友也许有所帮助:1. C57Bl/6小鼠2. 处死小鼠,75%酒精浸泡10min3.解剖取出小鼠股骨和胫骨4.取出骨上组织5.冲洗骨髓腔,直至骨变白6.收集的细胞沉淀一10000/ml接种,培养液含200U/mlrmGM-CSF和IL-4
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隔天换液并补充细胞因子,到第三天的时候如图:可以见到出芽状的突起,突起还不是特别多,也不是很长 第8天的时候,细胞形态已经出来,如图所示: 细胞形态具有典型的树突状细胞形态,长长的突起,到这个时候细胞已经比较成熟了,补充一下:第七天半量换液的时候,加入TNF-a刺激细胞成熟嗯我是根据1999年lutz的方法,当然做了一些改进,培养DC很多人用的是高浓度的细胞,高浓度的因子,但是这样产量不高,我每一次分离一只小鼠的骨髓,大约可以得到10E+7个细胞,分成10盘,每盘10ml培养基,用低浓度的细胞因子,这样可以大大提高产量,每次能培养得到1*10E+7个DC左右,流式细胞术检测:细胞纯度应该大于90%,这个方法还是很好用的。
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一张图片发不完,只能再加一个
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分离的时候注意严格无菌操作,骨头取出来,去除了骨上组织之后,在75%无水酒精里面浸泡2分钟,然后用1640清洗4次,再冲洗骨髓,不容易被污染2. How many cell will you get genreally from one mouse?培养之前细胞数大约是10的7次方左右(杂的细胞),培养之后1*10的7次方,文献报道的是10的8次方,我做得最好的时候也没有那么多,保守一点1000 rpm 8min 的离心是不会对细胞造成任何伤害的,至少我做的时候没有见到细胞因为离心死去DC前体细胞是贴壁生长的,但是在成熟过程中,细胞是悬浮生长的,不会贴壁,收集的时候收集细胞培养液离心收集2. 200U/mlrmGM-CSF和IL-4 —— 是指两种因子分别是 200U/ml ? 是的,两种因子的终浓度都是200U/ml3. 第七天半量换液的时候,加入TNF-a刺激细胞成熟 —— TNF 浓度是多少,为什么加 TNF ?TNF-α一方面抑制粒细胞的产生,另一方面促进DC的成熟,使其具有很强的刺激T淋巴细胞的活性。因为我做的是要DC体外激活淋巴细胞所以加了TNF,TNF-a我加的终浓度是1000U/ml,刺激18小时候就收集细胞照片是在收集细胞于6孔板的时候照的,培养DC的时候肯定是有一些贴壁细胞的,不影响,而且中间还可能混有一些淋巴细胞,只是在没有IL-2存在的情况下,淋巴细胞生存不了多久,拍照片是在收集之后,没有收集的时候细胞没有这么密,背景也有贴壁细胞,只是在GM-CSF浓度低(200U/ml)的情况下,相对于高浓度(1000-2000U/ml)来说贴壁的细胞少得多,这个是什么原因,我也不太清楚,也没有查文献考证,只是主观地认为那可能是一些巨噬细胞,希望你实验顺利!活性单位是个效应单位,是表示生物制品的活性的,和质量单位不是简单换算关系。有生物活性的物质,往往可杀死生物(如抗生素可杀死细菌)或促进生物增殖作用(多数细胞因子可促进细胞增殖)。在活性检测时,设定一个浓度剃度,测得最小致死量(如:抗生素)或最大有效量也称饱和有效量(如:某些细胞因子)的浓度,然后取中位数(即半数致死量或半数有效量)的倒数就是活性单位。如:RD的说明书注明GM-CSF的Activity(活性):ED50 =10 - 60 pg/mL(ED50,ED是最大有效量,50表示50%,ED50就是半数最大有效量)。你取其倒数,就可算出它的活性单位了,因此,它活性远超1U/ng。生物制品的活性不是固定不变的,不同的公司、不同的批次,其活性都不同,其中RD的细胞因子活性是比较好的,也是比较稳定的。我公司自主研发的rmGM-CSF的活性也相当不错,可和RD的媲美,远好于peprotech的rmGM-CSF,而且价格只有RD的1/4,因此,得到国内众多研究机构的喜爱到RD公司的网站上会有换算的方法,就是1ug=XXX WHO U如果实在找不到的话悄悄话发你的邮箱,我会发给你的我知道cj兄的因子,上次我请示老板说你们的因子也很好,想买,老板表示否定,我也不能做主,所以非常抱歉啊!我们是GM-CSF是我公司(杭州隆基生物技术有限公司)自己研发。目前,在过来已有40多家科研单位长期订购,反应还是非常好。我接触的不少网友,他们都说自己已经养出DC,只是数量少、纯度低,而当他们提供照片时,就发现绝大多数网友其实并没有养出一个DC,而仅仅是几个为数不多的杂细胞。他们的普遍特点是没有集落形成。不知你培养的DC集落多吗?如果没有典型的密集而硕
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