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黄曲霉侵染前后大豆可溶性蛋白与可溶性淀粉酶活性变化的研究 实验小组成员：朱敏超 赵亚克 徐立静 朱彦敏 王芳 摘要：采用分光光度法对黄曲霉侵染前后大豆三种酶（α-淀粉酶、β-淀粉酶）活力随时间变化测定。实验结果表明：接种48h后总酶活性最高，接种36hα-淀粉酶活性最高，接种12hβ-淀粉酶活性最高，两种酶之间的变化无明显同步性，两大豆品种中两种酶的活性变化趋势也不尽相同，蛋白含量与正常大豆、破皮大豆相比也明显下降。 关键词：大豆、黄曲霉侵染、α-淀粉酶活性、β-淀粉酶活性、蛋白质含量 引言：大豆被称为“豆中之王”，“田中之肉”，“绿色的牛乳” 等，它的营养价值很高，其数百种天然食物中最受营养学家推崇的食物，然而在收获，贮藏过程中极易受黄曲霉菌的侵染，淀粉酶主要包括α-淀粉酶、β-淀粉酶，葡萄糖淀粉酶和R-酶，它们广泛存在与动物、植物和微生物界。不同来源的淀粉酶，性质有所不同。植物中最重要的淀粉酶是α-淀粉酶和β-淀粉酶。淀粉酶活力大小可用其作用于淀粉生成的还原糖与3，5-二硝基水杨酸的显色反应来测定，还原糖作用于黄色的3，5-二硝基水杨酸生成棕红色的3-氨基-5-硝基水杨酸，生成物颜色的深浅与还原糖的量成正比。本研究旨在通过对黄曲霉侵染前后的大豆中α-淀粉酶β-淀粉酶酶活性的变化进行比较分析，以前从酶活性变化角度揭示大豆在黄曲霉侵染条件下的生理生化机制，为大豆抗黄曲霉研究提供理论依据。 一.材料与方法 材料 接种黄曲霉的大豆，黄曲霉菌株 仪器与用具 分光光度计、离心机、微波炉、电子天平、恒温水浴锅、离心管、研钵、容量瓶（100ml、250ml、1000ml）、试管、具塞试管25ml 3．方法 ①.材料处理 次氯酸钠消毒处理大豆，采用无菌水清洗除掉残留的次氯酸钠，清洗后除皮，将剥皮后的种子接种喷施黄曲霉孢子液，每个培养皿放置200粒，开始计时，并且取零时刻种子各10粒，放置样品袋，液氮速冻，取样时间分别在3h,6h,12h,24h,36h,48h。 ②.试剂 1%淀粉溶液，0.4mol/l NaOH溶液， pH5.6柠檬酸缓冲液，3，5-二硝基水杨酸，还原糖标准液，标准蛋白质溶液，考马斯亮蓝G-250蛋白试剂 ③.黄曲霉侵染的大豆酶液提取 称取10粒黄曲霉侵染过的大豆，置研钵中加少量石英砂和10ml左右蒸馏水，冰浴研成匀浆，无损转入100ml容量瓶中，用蒸馏水定容至100ml，每隔数分钟震荡一次，提取20min，3000r/min离心10min，转出上清液备用。 ④.淀粉酶总活力测定 取3支试管编号123，各加酶液1ml和pH5.6柠檬酸1ml，然后将2号试管70℃水浴15min，将3号试管加入4ml 0.4mol/lNaOH溶液，在三支试管中各加淀粉2ml摇匀，40℃水浴5min后，将12管中各加4ml 0.4mol/lNaOH溶液，将三支试管沸水浴5min，定容至25ml，520nm比色，记录数据。 二.结果分析与讨论 1. 可溶性蛋白含量变化 1.标准曲线的制作 可溶性蛋白标准溶液的吸光度 蛋白质含量 0 20 40 60 80 100 吸光度 0 0.179 0.323 0.429 0.636 0.715 2.样品液蛋白质含量的吸光度 时间 0 3 6 12 24 36 48 平均值 方差 ttest 　 黄曲霉 0.291 0.167 0.27 0.259 0.35 0.24 0.272 0.2641 0.003039 12 0.005984246 剥皮大豆 0.435 0.649 0.443 0.549 0.53 0.365 0.36 0.4759 0.01112 23 0.002897073 对照组 0.244 0.371 0.256 0.2 0.424 0.3 0.245 0.2914 0.006333 13 0.467911762 由标注曲线及各所测数据，根据计算公式可算出各组蛋白质含量下图 蛋白质含量（微克） 时间 0 3 6 12 24 36 48 平均值 方差 ttest 　 黄处理 288 202 274 266 329 253 275 269.5714 1462.286 12 0.005934 剥皮 388 536 394 467 454 340 336 416.4286 5314.619 23 0.002804 对照组 256 344 264 225 380 294 256 288.4286 3037.952 13 0.469958 由图可知黄曲霉处理的大豆与剥皮大豆的比较 ：差异显著，黄曲霉处理后大豆中蛋白质含量明显小于剥皮后大豆；剥皮大豆与对照组大豆差异显著，剥皮大豆中蛋白质含量明显高于对照组；黄曲霉处理的大豆与对照组大豆无明显差异。 本实验研究表明，黄曲