流式细胞仪上机培训手册讲述.docx

流式细胞仪上机操作培训手册 一、样本处理 以PBMC表面抗原的流式检测步骤为例 1) 取样。取新鲜提取或冻存后复苏的PBMC； 2) 编号。根据实验设计，标记好流式管，如每份PBMC设两管： a) 1号管：相应同型对照； b) 2号管：CD3,CD4,CD8,CD56四标管； 3) 加样。用移液器取100ul细胞/管（约1×106个细胞/管），分别加到已经标记好的流式管底部； 4) 洗涤。加入1ml PBS/管，涡旋1600rpm/min，离心6min； 5) 染色。弃上清，加入100 μl PBS/管涡旋混匀细胞，并根据实验设计，向各流式管中加入相应的荧光素标记抗体，混匀，室温避光孵育30min（操作尽量保持在避光条件下进行。） 6) 洗涤。加入1ml PBS/管，涡旋1600rpm/min，离心6min； 7) 重悬。弃上清，加入0.5ml PBS/管，混匀，上机检测(可选择BD FACSCanto II或BD Accuri C6)。 （注：若不能及时上机，应加入4%多聚甲醛固定，并于4℃避光保存。） 8） 试验结果分析。 （注：实验过程中如果进行多色标记，需要调节荧光补偿）。 参考值： CD3+ 60.8-75.4% CD4+ 29.4-45.8% CD8+ 18.2-32.8% NK（CD3-CD56+） 9.5-23.5% 二、上机检测 BD FACSCanto II简要操作流程 启动流式细胞仪 1 打开流式细胞仪电源 2 启动计算机，打开软件登录 3 确保软件连接到流式细胞仪 必要时，点击Cytometer connect 检查液体水平 1 启动流式细胞仪后，检查液体水平 低液面水平或者废液桶满都用红色指示。 2 如果液流车未自动开启，选择Cytometer Fluidics Startup。 3 当液流启动完成后，点击OK关闭对话框。 检查气泡 1 在检查完液体水平后，开启流动室门，检查流动室中是否有气泡。 2 如果没有看到气泡，进行第5步。如果看到气泡，点击Cytometer Cleaning Modes De-gas Flow Cell. 3 当完成信息出现后，点击OK。 4 如果还可以看到气泡，重复上述操作。 注意：如果打开流动室细胞进口门时出现错误信息，通过关闭进口门，并等待30秒关闭该信息。 5 当您完成上述操作后，在往下进行之前请先检查激光预热是否已经完成。 创建实验 1 按照需要，在工作区工具栏中点击相应的按钮来显示浏览器、细胞仪、检测器、工作表、获取控制板和双指数编辑器窗口。 2 创建文件夹： A 在浏览器中选择数据库图标，并点击浏览器工具栏上的New Folder。 B 对该文件夹命名。 3 选择该文件夹，点击New Experriment来创建一个新实验。 4 对该实验进行重命名。 5 选择实验级别的细胞仪设置，然后点击Inspector(检测器)中的Parameters(参数)选项卡。 6 按照需要变更，添加或者删除参数。 运行样本并记录数据 1 将样品管安装到流式细胞仪中并点击Aquire Data(获取数据)。 A 把抽吸臂向左侧推。 B 把流式管放置到SIT上，确保试管竖直，并用力向上推试管直到试管完个停止并完个就位。 C 把抽吸臂放置到试管下的中心位置。抽吸臂上有3个传感器引脚。试管底部应定位在 这些引脚的中心位置内。 2 调节FSC和SSC电压以正确显示细胞的散射光特征。 3 必要时，点击阈值图标并对FSC阈值进行调节。 4 调节P1门仅围绕目的细胞群体。 5 调节好后，点击Record Data(记录数据)以记录数据。 6 获取停止，取出试管。 建立全局工作表 1 如果用户参数中启用了Default global worksheet(默认个局工作表)(默认选项)，则全局工作表已经存在。展开全局工作表文件夹来定位和重命名工作表。（注：如果Default global worksheet被禁用，则通过点击浏览器工具栏中的New Global Worksheet(新个局工作表)按钮创建个局工作表。） 2 使用设计对话框定义参数标记并指定各个试管要记录的细胞颗粒数。标记会出现在点图轴上和所有的统计结果图中。 A 选择Experiment(实验)Experiment Layout(实验布局)。 B 在Labels(标签)选项卡中，为试管输入适当的标签。例如，在FITC域中输入CD3。使用Tab键移动到下一个域。 3 在该全局工作表中，创建用预览数据的点图。例如:创建PerCP-Cy5.5对SSC,FITC对APC, FITC对PE, FITC对PE-Cy7和F ITC对APC-Cy7点图。 设门 通过设门的方法可以定义细胞亚群的区域。如：PBMC样