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目 录
[摘 要] 1
[关键词] 1
引言 1
1.实验材料和方法 1
1.1 材料与试剂 1
1.2 实验方法 2
2 实验及结果 2
2. 1 溶液的配制 2
2. 2 测定波长的确定与标准曲线 2
2.3 总黄酮含量测定 3
2.4 初步实验操作及结果分析 3
2.4.1药材提取时间的选择 3
2.4.2 提取加水量研究 3
2.5 正交实验的结果 4
2.6 70%乙醇提取工艺的研究 7
2.7 水提取甲壳素沉淀除杂法工艺研究 7
3 实验结果与讨论 7
4.结论 8
[参考文献] 8
致 谢 9
声 明 10
小叶榕浸膏生产工艺研究 研究小叶榕浸膏生产的最佳工艺条件。 通过初步实验和正交实验,以总黄酮含量为指标,对小叶榕浸膏生产过程中的关键要素进行优选。 所考查的因素中,小叶榕浸膏提取工艺各因数影响程度为:醇沉时溶液相对密度加水量提取时间;最佳搭配为:A2B3C1。 小叶榕浸膏生产的最佳工艺条件为:加水量27(19+8),、提取时间4(3+1)小时,醇沉时溶液相对密度1.18/80℃。小叶榕浸膏引言
Ficus microcarpa L.f.,入药主用其叶。研究表明,[1,2]。以小叶榕浸膏为主要原料的产品—咳特灵片、咳特灵胶囊,由于疗效确切已被中华人民共和国卫生部药品标准所收载[3],目前全国生产企业达210家以上[4]。
目前浸膏的法定生产工艺为:水提—浓缩—乙醇沉淀。由于现行法定标准对生产工艺规定不够严格,浸膏生产的三大主要因素:药材提取时的加水量、提取时间、醇沉时溶液的相对密度等没有明确规定,造成各企业浸膏质量水平参差不齐。虽然,近年来一些单位对浸膏的生产工艺做过研究,但结果有矛盾之处[5,6],而以法定生产方法为依据的浸膏生产工艺研究未见报道(CNKI数据库)。故本课题以浸膏总黄酮含量为指标,对前述3个主要因素开展初步实验和小叶榕药材:采集广西天等县,经植物园胡廷松教授鉴定为Ficus microcarpa L.f.干燥叶。芦丁对照品:中国药品生物制品检定所,批号:100080-200306中国药品生物制品检定所,批号乙醇、甲醇、苯、乙酸乙酯等试剂均为分析纯。
WFZUV-2102 型分光光度计(上海优尼柯仪器有限公司)、真空干燥箱、1/10万分析天平、ZF—I型三用紫外分析仪等。
.2 实验方法
1.2.1工艺流程
加水定量过滤、蒸发浓缩 酒精调含酒量80%榕树叶 水提取液浓缩液
定时提取 定相对密度/温度静置、过滤
蒸发浓缩、干燥
最佳提取工艺
总黄酮含量测定、分析
:通过对相同产地、批次药材4个不同提取时间、4个不同加水量、5个不同酒沉相对密度的初步研究,确定浸膏提取比较优化的提取条件。
:以浸膏提取比较优化的提取条件,开展3因素3水平的实验研究,通过L9(34)正交表的分析,探索出最佳提取方案。
2. 1 溶液的配制
精密称取干燥恒重芦丁,置10ml量瓶中,加甲醇稀释至刻度,摇匀,精密量取5ml,置50ml容量瓶中,加水稀释至刻度,摇匀,即得浓度为mg /l对照品溶液。精密取上述芦丁对照品溶液1.0ml、2.0ml、3.0、4.0ml、5.0ml与6.0ml,分别置25ml容量瓶中,各加水至6ml,加5%亚硝酸钠溶液1ml,摇匀,放置6分钟,加10%硝酸铝溶液1ml,摇匀,放置6钟,加氢氧化钠试液10ml,加水至刻度,摇匀,放置15分钟,作为供试液。分别置25ml量瓶中,各加水至6ml,加5%亚硝酸钠溶液1ml,摇匀,放置6分钟,加10%硝酸铝溶液1ml,摇匀,放置6钟,加氢氧化钠试液10ml,加水至刻度,摇匀,放置15分钟取供试品及4.0ml供试品溶液在200~700nm波长下扫描,结果两溶液在385nm处有共同的最大吸收峰,故选择385为测定波长。照分光光度法(中国药典2005年版一部附录íA ) 在385nm 波长处测定吸收度以吸收度为纵标, 浓度为横标进行线性回归, 得回归方程为: Y=18.31X﹢0.008 r=0.9992。线性范围~g/ml。分别取干浸膏细粉置容器中,加甲醇加热回流,滤过,滤液转移至50ml量瓶中,加甲醇稀释至刻度,摇匀。精密量取5ml,置25ml量瓶中,加水至6ml,加5%亚硝酸钠溶液1ml,摇匀,放置6分钟,加10%硝酸铝溶液1ml,摇匀,放置6钟,加氢氧化钠试液10ml,加水至刻度,摇匀,放置15分钟,以相应的溶液为空白。照分光光度法(中国药典2005年版一部附录V A),在385nm 测定吸收度,按Y= 18.31X+ 0.008 (Y为吸收度,X为浓度,单位为:mg/ml)计算各方法所得干浸膏量和总黄酮量。
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