寄生虫教学实习2013-5-26讲解.ppt

《兽医寄生虫学》教学实习;实验一 羊体的蠕虫学剖检和虫体采集;疥螨：用小刀刮皮肤患部的干硬痂皮,再刮取病部与健康皮肤交界处的皮屑,至微出血为止,将此皮屑放在空瓶内或保存液(甘油酒精液)内保存。 蠕形螨:在毛囊内, 皮下形成米粒大小的结节,可将结节切开取其内容物涂片镜检,或者连皮肤切下,放在10%福尔马林或70%酒精内固定保存。;2) 体内寄生虫的采集;①首先检查食道的正反面,是否有美丽筒线虫及住肉孢子虫, 如果发现寄生虫可连同被寄生的组织一起剪下,保存于巴氏液中。;②肺脏: 首先剪开支气管及大支气管,检查是否有大型肺线虫(网尾线虫);③肝脏:先检查是否有细粒棘球蚴,然后去掉胆囊,检查内部,并切开胆管,检查有否肝片吸虫或矛形双腔吸虫的寄生,然后将肝撕成小块用清水反复冲洗至上部液体清亮为止,倒去上清液,将沉渣倒入盘内检查有无虫体。 ④胰脏和检查肝脏???方法相同,检查有否胰阔盘吸虫。;⑤肠系膜：检查肠系膜血管是否有血吸虫,并将肠系膜淋巴结切开检查有无舌形虫的幼虫,注意肠系膜上是否有细颈囊尾蚴的寄生,如有,可取下放于70%酒精或巴氏液中。; ⑥胃: 将胃分离,首先切开第一胃(瘤胃)倒出内容物,检查吸附在胃粘膜上的前后盘吸虫。 然后将第四胃(皱胃)的内容物倒入瓷盆内,将其翻过来用生理盐水充分洗净,再用生理盐水反复冲洗,最后将沉渣倒入大培养皿内检查是否有捻转血矛线虫、奥斯特线虫、马歇尔线虫以及古柏线虫等,如发现虫体,可用解剖针挑出放于保存液中。 ;⑦小肠： 沿肠系膜对侧长轴剪开肠壁,先从十二指肠开始,边剪开边检查,并把肠内容物接到搪瓷盘内, 如有寄生虫,用镊子夹到1%盐水内, 在羊小肠内可以发现:羊斯克里亚宾吸虫、莫尼斯绦虫、无卵黄腺绦虫、曲子宫绦虫、仰口线虫、类圆线虫、毛细线虫、古柏线虫、细颈线虫、奥斯特线虫、毛圆线虫等。 当发现有绦虫时,应轻轻的用剪刀尖紧贴肠壁,避免剪断虫体。其次应留心前端细小的头节不可拉断或失去,要小心的刮下完整头节,如果有头节牢固吸着宿主肠壁则须连同肠壁组织一起取下,一般不超过5分钟。(时间过久水分渗入虫体内,就破坏了内部组织器官,影响鉴定)。洗净的虫体放于70%酒精或巴氏液固定保存。;⑧大肠: 将大肠的内容物倒入桶中,翻转大肠,用水冲净,再将内容物反复冲洗,然后将沉渣倒入玻璃盘内检查,在大肠中主要有毛首线虫、夏伯特线虫、食道口线虫等寄生,另外还应注意检查肠壁上有无粟粒大至豌豆大的结节(食道口线虫引起的结节)。将采集到的虫体组织浸于70%酒精或巴氏液中保存。;寄生虫标本的保存 ;线虫通常是用巴尔巴卡罗氏液(简称巴氏液)固定保存,配方如下:福尔马林液30毫升,食盐7.5克,水1000毫升,吸虫、绦虫和棘头虫则常用70%酒精固定保存。 鉴定：小型线虫一般比较弯曲,可把虫体逐条放入40-50℃热生理盐水内,使虫体伸直,便于鉴定,然后把虫体移入固定液内。;在固定保存吸虫和绦虫之前,应先将虫体浸入常水中(或冰箱中12小时)，使之死亡。这样可使虫体的组织松弛。需要制片时,可将虫体平放于载玻片上,加盖一张载玻片,并稍加压力把虫体压平至适当薄度后(依虫体的大小薄厚而定),放在培养皿内,加入10%福尔马林液固定之。一般固定数小时,较大型的虫体要在一天以上。固定后,翻开盖在上面的玻璃片把虫体标本慢慢取下,置于盛有5%福尔马林的玻璃瓶中固定保存。 绦虫的幼虫可固定保存于巴氏液中。;在固定棘头虫时,如果他们的吻突缩在吻囊里,则须用手轻压,使吻伸出以后,再用70%酒精固定,也可用巴氏液固定保存。 ;蠕虫学剖检记录和标签的书写;;实验二 线虫制成装片标本;实验三 三种鸡抗球虫药的效力比较试验;2、试验鸡分组;3、投药方法;4、人工接种;5、试验观察及处理;第 8 天将各试验组雏鸡分别进行扑杀剖检，一般先扑杀不感染不给药组，然后为给药组，最后是感染不给药组。剖检器具要分开，每组一套。 剖检前逐只称重，剖检后重点检查盲肠病变，根据病变标准进行评分。 然后将盲肠按试验组进行消化（消化液配方为：浓盐酸0.7ml、胃蛋白酶0.5-1g、蒸馏水100 ml）或制成匀浆，来计数盲肠卵囊数。 ;6、药效判定方法;(1）相对增重率得分 以不感染不给药组在试验期间每鸡的平均增重为100%，算出其它各组每鸡的平均增重百分率，即相对增重率，相对增重率x100即为相对增重率得分。 (2）存活率得分 以不感染不给药组的存活率为100% ，算出其它各组试验鸡存活率，存活率x100即为存活率得分。 ;(3）血粪扣分 分别对各组试验鸡生前最严重的一天血粪进行记分，该天每鸡平均血粪堆数在 1-3.9堆，则分别记 1-3.9分，如平均3.5堆即记3.5分，依次类推。 4堆及其以上的计4 分，一直无血粪的记 0 分。血粪记分x5即为该组血