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实验一 质粒DNA的提取; 实验目的
实验原理
实验仪器、材料与试剂
实验步骤
实验结果及讨论 ;实验目的;实验原理;结构的三大要素:
多克隆位点
选择标记(耐药性,LacZ)
独立的复制单位
种类:
质粒
噬菌体
酵母人工染色体(YAC)
反转录病毒载体
表达载体等;;pET-32a Vector;pET-32 cloning/expression region;;;实验仪器、材料与试剂 ;(二) 材料 ;(三) 试剂 ;2. 溶液Ⅰ:葡萄糖(50mmol/L );Tris·HCl( 25mmol/L, pH8.0); EDTA (10mmol/L)
3. 溶液Ⅱ: NaOH (0.2mol/L) ;SDS ( 1%,新鲜配制)
4. 溶液Ⅲ: 60ml的 5mol/L KAC ; 11.5ml的冰醋酸 ; 28.5ml H2O;5. 氨苄青霉素(Amp)
用无菌水配制成100 mg/ml 溶液,置-20℃冰箱保存备用。
6. RNaseA
将RNA 酶 A溶于10 mmol/L Tris.Cl (pH 7.5)、15 mmol/L NaCl中, 配成10 mg/ml的浓度,于100℃加热15分钟,缓慢冷却至室温,分装成小份保存于-20℃。
7. 酚/氯仿(1:1),氯仿/异戊醇(24:1),乙醇 ,75%乙醇。 ;实验步骤 ;6. 15,000rpm,离心10min,将上清移至一干净的1.5 ml Eppendorf 管中,注意所取体积(约400 ? l ) 。
7. 加入等体积酚/氯仿(1:1),颠倒数次混匀(注意动作轻),12,000rpm,4℃,离心3min,取上清液。
8. 小心吸取上清液中至一干净的1.5 ml Eppendorf 管中,加入等体积的氯仿/异戊醇(24:1),颠倒数次混匀, 12,000rpm,4℃,离心3min,取上清液。 ;9. 小心吸取上清液中至一干净的1.5 ml Eppendorf 管中,加入2倍体积的无水乙醇,颠倒混匀,于冰上放置10min, 4℃离心,15,000rpm,10min。
10. 弃上清,加1ml 75%乙醇漂洗沉淀, 4℃离心,10,000rpm,5min。
11. 去掉上清(注意沉淀勿丢失),室温或真空干燥沉淀。
12. 加入50 ? l TE buffer,室温振荡溶解质粒DNA。;培养细菌使质粒扩增;
? Tiangen质粒DNA 小量提取试剂盒(实际用)
操作过程
1. 柱平衡:向吸附柱CP3中(吸附柱放入收集管中)加入500 ? l 的平衡液BL,12,000 rpm 离心1 min,倒掉收集管中的废液,将吸附柱重新放回收集管中。
2. 将1-2ml 过夜培养的细菌菌液加入1.5ml 离心管中,12,000rpm离心1分钟,并弃去上清液。如有需要,可多次重复步骤2,以收集更多细菌菌体。但勿过量,以免影响提取质粒的质量。
3. 加200 ? l 溶液P1(用前检查是否已加入RNase A),重悬细菌体沉淀,使用移液器或涡旋振荡器彻底悬浮细菌沉淀。;4. 加200 ? l 溶液P2,温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解。注意不要剧烈振动,以防止基因组DNA 被打断,注意不要让反应持续超过5 分钟。
5. 加300 ? l 溶液P3,立即轻柔颠倒离心管6-8 次,充分混匀,此时溶液应该出现白色絮状沉淀。
6. 12,000rpm离心10 分钟。
如离心机转速不够可延长离心时间,直至形成紧密的白色沉淀。
7. 将步骤6 离心后得到的上清液转移到吸附柱CP3中,12,000rpm离心30-60秒,并弃去接液管内液体。
8. 向吸附柱CP3 内加600 ? l漂洗液PW ,12,000rpm 离心30-60 秒,并弃去收集管内废液。
9. 重复第8 步一次。;10.将吸附柱CP3 放入收集管中,12,000 rpm 离心2分钟,目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除。漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应(酶切、PCR等)实验。为确保下游实验不受残留乙醇的影响,建议将吸附柱CP3开盖,置于室温放置数分钟,以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。
11.将吸附柱CP3 置于一个干净的离心管中,向吸附膜的中间部位滴加40 ? l洗脱缓冲液EB,室温放置2 分钟,12,000 rpm 离心2 分钟,将质粒溶液收集到离心管中。
12. 提取的质粒DNA 可直接用于各类下游分子生物学实验,如果不立即使用,请保存于-20℃。;实验结果及讨论
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