神经及体液因素对循环.doc

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神经及体液因素对循环

实验八 神经和体液因素对循环,呼吸和尿生成的影响 2010年05月18日 星期二 下午 9:20 实验八 神经和体液因素对循环,呼吸和尿生成的影响 【实验目的】 1.学习采用微机生物信号实验系统(BL-410)同步记录动脉血压,呼吸运动和尿量等多种生物信号的实验方 法. 2.观察神经体液因素对循环功能,呼吸运动和尿生成的影响,并分析这些功能变化的机理及其相互关系. 【实验原理】 心血管系统的活动受神经和体液因素的影响,心交感神经兴奋使心跳加快加强,传导加速,使心输出量增加; 支配血管的交感神经兴奋,血管平滑肌收缩,血流阻力增加;支配肾上腺的交感神经兴奋,使肾上腺释放肾上 腺素和去甲基肾上腺,肾上腺素和去甲基肾上腺作用于心血管系统的α和β受体,使心血管系统的活动发生 变化;支配心脏的副交感神经兴奋,心率减慢,心肌收缩力减弱,兴奋传导减慢. 体内外各种刺激可以直接作用于呼吸中枢或通过不同的感受器反射性地作用于呼吸运动,由此调节呼吸运 动的频率和深度,使肺通气能适应机体代谢的需要. 尿生成的过程包括肾小球的滤过,肾小管的重吸收和分泌过程,凡能影响上述过程的因素都可以引起尿量的 变化. 【材料与方法】 一,实验对象:家兔 二,实验器材与药品:BL-410生物信号记录分析系统,压力换能器,保护电极,记滴器,哺乳类动物手术台,细 塑料插管,注射器,针头,纱布,棉绳,线,尿糖试纸,20%氨基甲酸乙酯溶液,0.5%肝素,5%枸橼酸钠,生理盐 水,20%葡萄糖. 三,方法与步骤: (一) 动物准备 1.麻醉与固定:用20%氨基甲酸乙酯行麻醉后仰卧固定与兔台上. 2.耳缘静脉输液. 3.颈部手术:分离气管,颈部两侧的减压神经,交感神经,迷走神经,颈总动脉. 4.气管插管记录呼吸. 5.左颈总动脉插管记录血压. 6.腹部手术:在左肋骨下做一约5cm纵行切口,打开腹腔,分离左肾上腺内脏大神经(支配左肾上腺)图9-1. 7.输尿管插管及尿量记录:插管方法见第六章第八节输尿管插管术.记滴器输入线输入BL-410生物系统相 应通道. (二) 仪器连接调试: 在桌面上双击BL-410机能系统进入界面→选择信号输入→选择相应通道→分别单击压力,呼吸. (三) 观察指标: 心率,动脉血压(收缩压,舒张压和平均动脉压),呼吸的频率和幅度,尿滴数/2min. (四) 观察项目: 1.记录对照观察指标 2.手持左侧颈总动脉远端的结扎线向下牵拉10S(频率快,幅度低). 3.夹闭右侧颈总动脉10S. 4.以连续刺激(强度3-5V,波宽2ms,频繁40-80Hz)分别刺激完整的减压神经,减压神经向中和向心端. 5.迷走神经的作用:切断一侧迷走神经观察记录各项指标的变化;切断另一侧迷走神经观察记录各项指标的 变化;用保护电极刺激右迷走神经外周端观察各项指标变化,适当延长刺激时间注意观察记录血压的变化; 连续刺激使血压下降维持在(5.3~6.6KPa)以下1分钟,观察指标的变化.刺激参数:刺激强度3-5V,波宽2ms, 频率应高于迷走神经平静时自发放电的3-4倍. 6.吸入气CO2浓度增加:将充有CO2的气袋导管上的针头斜对着气管插管,打开气量调节夹,使兔吸入气CO2浓 度增加. 7.吸入气O2浓度降低:将充有N2的气袋导管上的针头斜对着气管插管,打开气量调节夹,使兔吸入气N2浓度 增加,O2浓度降低. 8.增加无效腔:把一长30cm的像皮管连在气管插管的另一侧. 9.增加血容量:快速注射37℃的生理盐水10ml/kg. 10.尿糖定性:取尿量2滴进行尿糖定性对照,然后静脉注射20%葡萄糖10ml,观察动脉血压和尿量的变化.在 尿量变化增多时,再取尿液2滴作尿糖定性试验. 11.刺激内脏大神经:刺激参数同前,持续1分钟后持续观察40-60分钟的血压和尿量变化. 【实验结果】 剪缉并打印每个观察项目前后曲线,并贴于实验报告上.填此表. 神经,体液因素对心率,血压,呼吸和尿量的影响 观察项目 心率(次/分) 处理前 处理后 收缩压(Kpa) 处理前 处理后 舒张压(Kpa) 处理前 处理后 呼吸频率(次/分) 处理前 处理后 呼吸幅度(cm) 处理前 处理后 尿量/2分 处理前 处理后 【注意事项】 1.实验前应给兔多喂青菜. 2.手术操作应轻柔,避免损伤性尿闭,腹部切口不可过大,剪开腹膜时避免损伤内脏. 3.注意给动物保温. 4.每完成一个项目必须待尿量和血压恢复稳定后,才能进行下一项的观察项目,进行每项前必须观察在对照 情况下的观察指标. 实验讨论: 1. 正常家兔血液总量约体重的5.5%即55毫升/公斤,如家兔体重2.5公斤,则血液量为138毫 升,??? 一次快速iv0.9%生理盐水20毫升,使血容量增了15%—22%,会引起如下情况: (1): 血液被稀 释,血浆

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