常规切片的注意事项_百替生物.pdf

常规切片的注意事项 1 . 取材 取材的好坏，直接影响切片的质量。医生在取材时，首先要有一把锋利的取材刀，在切割组织时 要避免取材刀来回拖拉，切取的组织块厚薄要均匀，一般厚度以0.2 ～0.3cm 为适，较容易发脆的组 织如甲状腺、肝脏、血块、淋巴结、大块癌组织等可适当厚一点，而脂肪组织、肺组织、纤维性肿瘤、 平滑肌瘤等致密的或试剂不易渗入的组织应取薄一些；淋巴结应修掉两侧球冠，并尽量剔除周围的脂 肪组织。在取材中还应十分注意组织内是否有缝线或骨组织，如碰到不可避免的钙化组织，应与技术 室讲明，在切取纤维组织、肌肉组织、胃肠道时，应注意纤维及肌肉的走向，取材时尽可能按与纤维 平行走向切取为佳。 2 . 固定 固定是技术室工作的第一步，也是在整个制片过程中无法补救的一步。所谓 “固定”，就是组织 离体后，用各种办法使其细胞内的物质尽量接近其生活状态时的形态结构和位置的过程。固定的目的 是为了防止组织细胞自溶与腐败，防止了细胞内的酶对蛋白质的分解作用，使细胞内的各种成分如蛋 白质、脂肪、碳水化合物或酶类转变为不溶性物质，以保持原有的结构与生活时相仿。另外，组织固 定后，均呈一定的硬化状态，增加组织韧性，而且不易变形，有利于以后的组织处理。所以组织一旦 离体必需及时固定，固定液的量应为组织的5 倍。固定的关键主要与固定的及时性、固定液的选择、 固定液的浓度、固定的温度和时间有关。最常用的固定液为10％福尔马林。笔者认为，10％福尔马林 由于受到福尔马林的质量、使用时的挥发和取材时带入的水分影响，浓度被降低致组织固定不足，而 高浓度的福尔马林，降低了对组织的穿透性，形成周围固定好而中央固定不到的现象。通过实践，本 人认为以酸性 12～15％的福尔马林最佳。大标本（2cm 厚）一般需要6～12 个小时，小标本一般需要 3～6 个小时；当室温低 18℃时，可在37℃以下的温箱内加温4～6 个小时。由于HE 染色最佳着色PH 为3.5～4.5, 中性福尔马林对苏木素染色有一定影响,细胞核容易发灰,核染色质不佳。 所以, 尽管中性福尔马林对抗原有很好的保存作用，但酸性福尔马林对绝大多数抗原来说也有很 好的保存作用，所以在没有特别处理的情况下常规HE 用 12～15％酸性福尔马林也可以（每100 毫升 12～15％福尔马林液内加5 毫升冰醋酸）。骨髓、结缔组织固定以Bouin 液为佳，经Bouin 液固定后的 组织必须流水冲洗4 小时以上。有条件的单位可根据不同要求选用二种或二种以上的固定液；少数单 位还可建立组织冷冻库，以便适应各种特殊的处理要求。 3. 水洗 固定后水洗（10～20 分钟），通常被很多人所忽视，而水洗不彻底，容易造成脱片和染色不鲜艳。 对需做免疫组织化学的组织，更不应当忽视。福尔马林不利于组织块内抗原的保存。 4 . 脱水和透明 所谓脱水就是利用脱水剂将组织内的水分置换出来，以利于有机溶剂的渗入，这一过程称为脱水。 脱水是否彻底，直接关系到组织是否能充分透明，而脱水过度（原因是组织在纯酒精内时间过久，发 生组织质地发生变化）容易造成组织发脆。造成组织发脆的原因还有加温（温度超过 35℃）、脱水剂 内加有丙酮、浸蜡用的石蜡中二甲苯过多等等。一般我们总认为组织发脆跟高浓度酒精有关，而忽视 了与低浓度的酒精关系，其实低浓度的酒精具有强大的穿透力，比纯酒精更容易渗透到组织块内部使 之脱水，组织如果在低浓度酒精里充分脱水，在高浓度酒精里只需脱去从低浓度到高浓度之间的水份， 因此，仅需短时间就可完成，如果这时不缩短纯酒精的时间，便会引起组织发脆；如果脱水时加温， 使用丙酮，还可引起组织收缩，并影响免疫组织化学的标记。为了使石蜡浸入到组织块内，必须经过 一种既能与脱水剂混合，又能与石蜡相溶的媒介物质，这个过程称透明。目前最好的透明剂是二甲苯。 很多人认为二甲苯极容易使组织发脆，这个观点很片面，在常温下，如果不是时间过长（超过２4 小 时以上）二甲苯并不会引起组织过份发脆，相反会使某些组织结构比较质韧的组织：比如子宫肌瘤等 相当好切），但是当二甲苯温度超过 35℃以后，极易引起组织发脆。所以本人认为，大小标本最好分 service@100 开脱水，一般情况下，大标本脱水时间（室温18℃）以80％酒精2 小时、95％酒精（2 道）各1 个半 小时至2 小时、纯酒精（3 道）各1 个半小时至2 小时，二甲苯（2 道）各30-60 分钟为宜；小标本脱 水时间应相应缩