实验六 原生质体的分离(周二组、周三第二组).ppt

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实验六 原生质体的分离(周二组、周三第二组)

第二组:1 % 纤维素酶 + 0.75 % 果胶酶 + 7 %甘露醇 1.5 %果胶酶20 mL :0.3 g果胶酶溶于20 mL 7 % 甘露醇中。 20 mL 2 % 纤维素酶与20 mL 1.5 % 果胶酶溶液混合,分装成24管,其中12管每管2 mL,12管每管1 mL。 第三组:1 % 纤维素酶 + 1 % 果胶酶 + 7 %甘露醇 酶液配制方法: 2 %果胶酶10 mL :0.2 g果胶酶溶于10 mL 7 % 甘露醇中。 10 mL 2 % 纤维素酶与10 mL 2 % 果胶酶溶液混合,分装成12管,其中6管每管2 mL,6管每管1 mL。 原生质体分离观察: 在血球计数板上分别滴一滴紫叶甘蓝原生质体,在显微镜下观察,统计原生质体个数填入表中。 对每个样品计数3次,记为重复1,2,3,取其平均值。 计数时,如果为16×25规格的计数室,取四个角的中格(即100个小格)计数。如果为25×16规格的计数室,取四个角的及中间的中格(即80个小格)计数。 对每个样品计数3次,取其平均值,按下式计算每毫升原生质的个数: 16×25规格的计数板: 原生质体数/mL =100小格内原生质体数/100×400×104 25×16规格的计数板: 原生质体数/mL =80小格内原生质体数/80×400×104 (二)注意事项 1、选择适宜种类的酶 分离原生质体最常用的酶有纤维素酶、半纤维素酶和 果胶酶。 2、酶液渗透压 分离原生质体酶液的渗透压应大致和原生质体内的相同。 3、植物材料的生理状况 要获得高质量的原生质体,则须选用生长旺盛、生命力 强的组织材料。 4、酶溶液的pH值 对原生质体的产量和生活力影响很大。一般为5~7。酶的 活性与pH值有关。Onoznka纤维素酶R-10最适宜pH值为 5~6。不同的材料、不同型号的酶其所要求的最适值是不 同的,应通过实验确定。 5、酶解温度 对酶解效率和植物原生质体的活力都有影响。适于植物材 料的温度一般都在25 ℃,所以一般在25 ℃左右进行酶解。 一、实验原理及意义(略) 二、试剂(略) 三、理论依据:见文献综述 四、实验方法与步骤及注意事项 (一)实验方法与步骤 1、查阅文献,撰写综述,设计实验方案 2、 蒲包花的购买与养护管理 3、试剂配制 4、原生质体分离 (二)注意事项(略) 材料处理方法 在两个5 mL离心管中分别加入2 mL 酶液,一份酶解黄色花瓣,一份酶解红色花瓣。将红色和黄色蒲包花花瓣切成宽约2 mm的小条(一端不断开,便于操作),分别加入到两个离心管中,酶解4-5小时。将酶解后的材料用300目的尼龙网过滤,收集滤液(过滤可省去)。 原生质体分离观察: 在血球计数板上分别滴一滴蒲包花原生质体,在显微镜下观察,统计原生质体个数填入表中。 对每个样品计数3次,记为重复1,2,3,取其平均值。 * * 辽宁师范大学生命科学学院 本科生综合性、设计性实验报告 实验题目:实验六 植物原生质体的分离 (一)紫叶甘蓝原生质体的分离 一、实验目的与意义 植物原生质体在生理生化研究、基因表达调控研究、基因定位研究、细胞器制备、细胞融合、新品种培育等方面有重要用途。 通过本实验,提高文献查阅、综述写作、植物材料培养、试剂配制等方面能力,并掌握原生质体分离的方法。 二、实验设备、试剂及材料 设备:恒温水浴锅、普通光学显微镜、倒置显微镜、电子天平、称量纸、移液管、容量瓶、烧杯、吸耳球、玻璃棒、磁力搅拌器等。 试剂:纤维素酶、果胶酶、磷酸氢二钾、磷酸二氢钾、甘露醇、 蒸馏水等。 紫叶甘蓝种子 三、理论依据:见文献综述 四、实验方法与步骤及注意事项 (一)实验方法与步骤 1、查阅文献,撰写综述,设计实验方案 2、 紫叶甘蓝籽苗的培养 3、试剂配制 4、原生质体分离 1、0.1 M pH5.7的磷酸钾缓冲液500 mL 0.2 M A液:称取13.6 g KH2PO4,溶于400 mL蒸馏水中,定容至500 mL。 0.2 M B液: 称取2.28 g K2HPO 4(0.2 mol/L),溶于40 mL蒸馏水中,定容至50 mL。 467.5 mL A液+ 32.5 mL B液混匀,即为500 ml pH5.7 磷酸钾缓冲液。 2、甘露醇溶液 根据各组浓度设计配制。 3、纤维素酶液与果胶酶溶液 根据各组浓度设计现用现配。 实验设计: 第一组:1 % 纤维素酶 + 0.5 % 果胶酶 + 7 % 甘露醇 酶液配制方法(酶液量可根据每组人数做适当调整): 2 % 纤维素酶50 mL : 1 g 纤维素酶溶于 40 mL 7 % 甘露醇 中,定容至5

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