生理学学生实验报告分析.doc

昆明理工大学医学院 生理学实验报告 实验坐骨神经-腓肠肌标本制备1] 实验目的 学习机能学实验基本的组织分离技术； 学习和掌握制备蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的方法； 了解刺激的种类。 2] 实验原理　　 蛙类的一些基本生命活动和生理功能与恒温动物相似，若将蛙的神经-肌肉标本放在任氏液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。若给神经或肌肉一次适宜刺激，可在神经和肌肉上产生一个动作电位，肉眼可看到肌肉收缩和舒张一次，表明神经和肌肉产生了一次兴奋。在机能学实验中常利用蛙的坐骨神经-腓肠肌标本研究神经、肌肉的兴奋、兴奋性，刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征等，制备坐骨神经腓肠肌标本是机能学实验的一项基本操作技术。 3] 实验对象 蛙 4] 实验药品 任氏液仪器与器械 普通剪刀、手术剪、眼科镊或尖头无齿镊、金属探针解剖针、玻璃分针、蛙板或玻璃板、蛙钉、细线、培养皿、滴管、电子刺激器。 6] 实验方法与步骤 破坏脑、脊髓 取一只，用自来水冲洗干净勿用手搓。左手握住，使其背部向上，用大拇指或食指使头前俯(以头颅后缘稍稍拱起为宜)。右手持探针由头颅后缘的枕骨大孔处垂直刺入椎管图3-1-1。然后将探针改向前刺入颅腔内，左右搅动探针2～3次，捣毁脑组织。如果探针在颅腔内，应有碰及颅底骨的感觉。 再将探针退回至枕骨大孔，使针尖转向尾端，捻动探针使其刺入椎管，捣毁脊髓。此时应注意将脊柱保持平直。针进入椎管的感觉是，进针时有一定的阻力，而且随着进针出现下肢僵直或尿失禁现象。若脑和脊髓破坏完全，下颌呼吸运动消失，四肢完全松软，失去一切反射活动。此时可将探针反向捻动，退出椎管。如仍有反射活动，表示脑和脊髓破坏不彻底，应重新破坏。 图-1-1 捣毁蟾蜍脊髓 剪除躯干上部、皮肤及内脏? 用左手捏住的脊柱，右手持粗剪刀在前肢腋窝处连同皮肤、腹肌、脊柱一并剪断图3-1-2，然后左手握住的后肢，紧靠脊柱两侧将腹壁及内脏剪去注意避开坐骨神经，并剪去肛门周围的皮肤，留下脊柱和后肢图-1-3)。 图-1-2横断脊柱图-1-3 剪除躯干上部及内脏 剥皮? 一只手捏住脊柱的断端注意不要捏住脊柱两侧的神经，另一只手捏住其皮肤的边缘，向下剥去全部后肢的皮肤图-1-4)。将标本放在干净的任氏液中。将手及使用过的探针、剪刀全部冲洗干净。 图-1-4 剥去皮肤 分离两腿? 用镊子取出标本，左手捏住脊柱断端，使标本背面朝上，右手用粗剪刀剪去突出的骶骨也可不进行此步。然后将脊柱腹侧向上，左手的两个手指捏住脊柱断端的横突，另一手指将两后肢担起，形成一个平面。此时用粗剪刀沿正中线将脊柱盆骨分为两半注意勿伤坐骨神经。将其中一半后肢标本置于盛有任氏液中备用，另一半放在蛙板上进行下列操作。 辩认蛙后肢的主要肌肉 蛙类的坐骨神经是由第7、8、9对脊神经从相对应的椎间孔穿出汇合而成，行走于脊柱的两侧，到尾端肛门处绕过坐骨联合，到达后肢背侧，行走于梨状肌下的股二头肌和半膜肌之间的坐骨神经沟内，到达膝关节腘窝处有分支进入腓肠肌。 游离坐骨神经和腓肠肌 用蛙钉或左手的两个手指将标本绷直、固定。先在腹腔面用玻璃分针沿脊柱游离坐骨神经，然后在标本的背侧于股二头肌与半膜肌的肌肉缝内将坐骨神经与周边的结缔组织分离直到腘窝，但不要伤及神经，其分支待以后用手术剪剪断。同样用玻璃分针将腓肠肌与其下的结缔组织分离并在其跟腱处穿线、结扎。 剪去其它不用的组织操作应从脊柱向小腿方向进行。 (a) 剪去多余的脊柱和肌肉?? 将后肢标本腹面向上，将坐骨神经连同2～3节脊椎用粗剪刀从脊柱上剪下来。再将标本背面向上，用镊子轻轻提起脊椎，自上而下剪去支配腓肠肌以外的神经分支，直至腘窝图3-1-5A，并搭放在腓肠肌上。沿膝关节剪去股骨周围的肌肉，并将股骨刮净，用粗剪刀剪去股骨上端的1/3保留2/3，制成坐骨神经-小腿的标本。 (b) 完成坐骨神经腓肠肌标本? 将脊椎和坐骨神经从腓肠肌上取下，提起腓肠肌的结扎线剪断跟腱。用粗剪剪去膝关节以下部位，便制成了坐骨神经-腓肠肌标本图3-1-5B。 检验标本? 用镊子夹持坐骨神经中枢端，如腓肠肌发生迅速而明显的收缩，说明标本的兴奋性良好。标本浸入盛有任氏液的培养皿中备用。 图-1-5 分离坐骨神经A)和坐骨神经腓肠标本B) [7] 注意事项 在操作过程中，应给神经和肌肉滴加任氏液，防止表面干燥，以免影响标本的兴奋性。 标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟，使标本兴奋性稳定，再开始实验效果会较好。 8] 实验图像 [10]结果及分析 毁脑脊髓后的应有何表现？ 制备好的神经肌肉标本为何要放在任氏液中？ 如何判断制备的神经肌肉标本的兴奋性？ 用各种刺激检验标本兴奋性时，为什么要从中枢端开始？ 刺激有几种形式? 实验 心脏灌流 1]［实验目的］ 　　1.学习蛙离体心脏灌流方法。