2015年分子生物学实验.PPT

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2015年分子生物学实验

* * * * * * * * * * * * * * * * * * * * * * * * * * * * * * * * * DNA Extraction Kit 试剂盒组成: Mini column: 50个 2ml Collection: 50个 Buffer KPL1 :50ml (lysis solution) Buffer KB :30ml (column balance solution) Buffer KW:(wash solution)使用前加50ml无水乙醇 Buffer KE: 10ml (elution) 操作步骤 (一) 平衡吸附柱 取一吸附柱装入2ml收集管中。 加入300ul Buffer KB至平衡柱,室温下12000rpm离心1min,废弃收集管中滤液,将平衡柱套回收集管备用 (二)样品处理 将10-100mg植物组织直接放入研钵,加入500ul的KPL1,研磨匀浆,然后转入1.5ml离心管,室温下12000rpm离心2min。 (三) 吸附 将上步离心上清液,移至平衡好的吸附柱中,室温下12000rpm离心30s,废弃收集管中过滤液,把平衡柱装回收集管。 (四) 漂洗 加入700ul Buffer KW,室温下12000rpm离心30s,废弃收集管中过滤液,把平衡柱装回收集管。 用700ul的70%乙醇洗涤平衡柱,12000rpm离心1min,废弃收集管中过滤液。 (四) 漂洗 将上步平衡柱套回收集管,室温下12000rpm离心2min,以甩干残液。 (五) 洗脱 把平衡柱装入新的1.5ml离心管,加入50ul的KE Buffer,65℃下放置5-10min,室温下12000rpm离心1min洗脱。 4℃下保存备用。 * * 【实验结果】 提取得到的DNA应为一条带,如DNA降解会出现弥散带。 【思考题】 1.在DNA提取时,SDS、NaCl、EDTA、氯仿/异戊醇及无水乙醇各起什么作用? 2.如何制备1%的琼脂糖凝胶? 【实验安排】 提前两星期准备幼苗,一个下午提DNA并检测。 * * * * * * * * * * * * * * 调中性,以利于细菌的生长繁殖 * * * * * * * * * * * * 仪器与试剂 1、琼脂糖凝胶电泳系统 2、紫外观察分析系统 3、单面刀片 4、离心机 5、恒温水浴锅 6、DNA回收试剂盒 7、ddH2O * * 实验步骤(具体步骤以试剂盒为准) 1. 在紫外灯下切分含DNA的琼脂糖块,尽可能除去多余的琼脂糖.放入1.5ml离心管中。 2. 按每100mg琼脂糖加入300—600μl 溶胶液的比例加入溶胶液(本实验加500ul),置55℃水浴10分钟,使琼脂糖块完全溶化,期间每2分钟颠例混匀一次促溶。 3. 将溶化后的琼脂糖液移入吸附柱,12000rpm 室温离心1分钟,倒掉收集管中的液体.再将吸附柱放入同一个收集管中。 4. 在吸附杜中加入500uI漂洗液,室温静置1分钟后, 12000rpm 室温离心30秒,倒掉收集管中的液体,将吸附柱放入同一个收集管中。 * * 实验步骤 5. 再在吸附柱中加入500uI漂洗液, 12000rpm 室温离心15秒,倒掉收集管中的液体,将吸附柱放入同一个收集管中。 6. 12000rpm 室温空离心1分钟。 7. 将吸附柱放入一个干净的1.5ml的离心管中,在吸附膜中央加入30ul洗脱缓冲液,室温静置2分钟后, 12000rpm 室温离心1分钟(为提高回收效率可再洗脱一次),将1.5ml离心管(DNA)贮存于-20℃。 8. 琼脂糖凝胶电泳检测回收产物。(可不做) * * 切胶示意图 * * 凝胶纯化结果示意图 注意事项: 切胶时应快速操作,在紫外灯下时间长容易伤害到眼睛; 溴化乙锭染色后的DNA易受紫外光破坏,故尽量放置于暗室,切带时应使用长波长紫外灯,切胶时间尽量短。 胶块一定要充分融化,否则将会严重影响DNA的回收率。 把洗脱液加热,使用时有利于提高洗脱液效率。 【思考题】 1、如何有效提高凝胶纯化PCR产物的效率? * * 实验七 大肠杆菌感受态细胞的制备与转化 【实验目的】 学习氯化钙法制备大肠杆菌感受态细胞和将外源质粒DNA转入受体菌细胞的技术及转化体筛选的技术方法。 【实验原理】 感受态细胞(Competent cells): 受体细胞经过一些特殊方法( 如:CaCl2,RuCl等化学试剂法)的处理后,细胞膜的通透性发生变化,成为能容许多有外源DNA的载体分子通过的感受态细胞(competent cell)。 * * 【实验原理】 转化(transformation): 是将异源DNA分子引入受体细胞,使其获得新的遗传性状的一种技术方法。 进

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