体液及细胞免疫检测应用在脓毒症患者诊断中临床效果.docVIP

体液及细胞免疫检测应用在脓毒症患者诊断中临床效果 　　DOI：10.16662/j.cnki.1674-0742.2017.11.004 [摘要] 目的 探?细胞与体液免疫检测诊断脓毒症患者的临床效果。方法 方便选取该院2015年7月―2016年7月收治的脓毒症患者68例，其中脓毒症37例，脓毒症休克31例；另选取同期于该院体检的健康人40名，检测3组CD4、CD8、CD4/ CD8细胞与IgG、IgA及IgM体液免疫水平。结果 脓毒症组CD4CD25Treg水平为（1.70±0.43）%，休克组为（3.55±0.82）%，明显高于健康组（P0.05）；脓毒症组与休克组CD4水平分别为（45.13±2.5）%、（23.23±1.6）%，均低于健康组（P0.05， and the CD4 level in the sepsis group and shock group was respectively（45.13±2.5）% and （23.23±1.6）%， which was lower than that in the healthy group（P 　　[Key words] Humor immunity； Cellular immunity； Sepsis 脓毒症为临床常见疾病之一，发生发展的主要原因在于机体免疫功能紊乱，主要死因为多器官障碍综合征，据统计[1]其死亡率约为30%～50%。适应性与固有免疫反应在促炎性反应中均有所参与，CARS期宿主会将炎性介质与体液因子释放出来，影响血管渗透性与张力后诱发微循环障碍，导致促炎/抗炎反应动态失衡，此为脓毒症向严重脓毒症、多器官功能不全及脓毒症休克等严重后果进展的主要原因之一[2-3]。当前临床意识到脓毒症患者主要致死因素之一为严重免疫功能紊乱，若能对其发展趋势予以了解，于免疫紊乱关键点实行免疫介入[4-6]，便于尽早将免疫稳态恢复阻碍疾病进展。为探讨细胞与体液免疫检测诊断脓毒症患者的临床效果，现选取该院2015年7月―2016年7月收治的患者68例与体检的健康人40名，现报道如下 1 资料与方法 1.1 一般资料 该次研究对象来源于方便选取该院收治的脓毒症患者68例，其中脓毒症37例，脓毒症休克31例，均与国际脓毒症定义会议制定的诊断标准相符，且排除自身免疫系统疾病、病毒性肝炎、急性脑卒中、感染HIV及心肌梗死患者；入院前3个月应用免疫抑制剂或激素者。另选取同期于该院体检的健康人40名。脓毒症组中17例为男性，20例为女性，年龄为54～79岁，平均（63.7±5.4）岁；脓毒症休克组中15例为男性，16例为女性，年龄为52～77岁，平均（62.4±5.1）岁；健康组中22名为男性，18名为女性，年龄为48～75岁，平均（60.2±4.5）岁。3组在一般资料上对比差异无统计学意义（P0.05） 1.2 检测方法 脓毒症组与脓毒症休克组患者均于发病后采集外周静脉血4 mL，添加20 U/mL肝素行抗凝处理，利用淋巴细胞分离液将淋巴细胞悬液分离出来，应用间接免疫荧光染色法对T细胞亚群予以检测。将制备好的淋巴细胞悬液各100 μL取出，将1：100稀释的100 μL抗CD3+、CD4+及CD8+单克隆抗体加入后孵育于室温下，时间为0.5 h，而后加入1：200稀释的100 μL二抗，同样孵育于室温下，时间为0.5 h，最后添加2 mL PBS液开始检测。用流式细胞仪，每份标本检测细胞数量为10 000个，在计算机上输入检测数据后用软件处理，将CD3、CD4、CD8及CD4/CD8数据结果输出。健康组常规收集静脉血并处理，而后应用流式细胞仪测定CD4、CD8水平，再应用免疫比浊法测定两组IgG、IgM及IgG水平 1.3 统计方法 主要应用SPSS 21.0统计学软件对上述数据开展分析和处理，计量资料表示方法为均数±标准差（x±s），组间用t检验，P0.05）；脓毒症组与休克组CD4水平均低于健康组（P0.05）。体液免疫方面，对于感染者而言血浆免疫球蛋白降低明显，该组主要检测IgG、IgA及IgM，结果脓毒症及休克组上述体液免疫指标水平均明显低于健康组（P 　　综上所述，检测细胞与体液免疫可有效诊断脓毒症患者，未来临床还需深入研究脓毒症的发生机制，以有效治疗，改善预后 [参考文献] [1] 赵永祯，李春盛.生物标志物组合对急诊脓毒症和重度脓毒症患者的诊断价值[J].中华危重病急救医学，2014，26（3）：153-158. [2] 张艳平.免疫调理改善脓毒症免疫功能的临床研究[J].按摩与康复医学，2011，2（30）：75. [3] 苏伟，杨智，王思荣，等.血必净注射液对重症脓毒症患者机体炎性反应和细胞