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封面故事-搞定WesternBlot六大问题搞定Western
封面故事 - 搞定 Western Blot 六大問題
搞定 Western Blot
撰文:謝馨慧
常見六大問題
西方墨點法 (Western Blot) 為常見的免疫學實驗技術之一,這項技術是由
美國史丹佛大學的 Towbin, et al. 於 1979 年提出此方法的雛形,主要是將
polyacrylamide gel 上的蛋白質轉漬到 nitrocellulose 轉漬膜上的方法以
及應用,然而在 1981 年時,Burnette 將這種利用抗體與抗原之間高度專
一性結合去偵測蛋白質的方法命名為 Western blotting,又稱做 immu-
noblotting。其實驗原理相當簡單,先將跑完電泳的蛋白質轉漬到 PVDF
或是 Nitrocellulose 膜上,利用阻隔劑 (Blocking buffer) 降低非專一性的
結合,並再利用有興趣的抗體去做後續的偵測(圖1)。然而,在這樣普及
的技術中,因過程繁瑣加上需準備物品多,因此影響結果呈現的變因也相
當的多,遇到問題的解決方式也都不同,以下為大家整理一些Western
Blot 常見的六大魔王,如果每個讀者都可以打敗這些問題,相信一定都做
出無可挑剔的 Data。
Coupled Enzyme
魔王一 Secondary Antibody
背景值太高,無法分辨目標蛋白
Primary Antibody
Immobilized Protein
原因1: 抗體濃度過高
在購買抗體的時候,無論是一抗或是二抗,通常會特別 Protein Binding Membrane
注意實驗的抗體稀釋倍數去做選擇,然而這樣的稀釋倍 圖1、Western Blot 的基本原理
數真的可信嗎?每一次的實驗都會因為使用的呈色試劑
、轉漬膜甚至是樣品的不同導致會有不同的結果,因此
沒有一定的”最佳濃度”,建議在實驗前先測試抗體適 X
用的濃度,再去做後續的實驗,尤其是利用高靈敏度的
呈色劑,例如 G-Biosciences 的 femto LUCENT PLUS
冷光呈色劑,是市面上最靈敏的呈色劑,更要稀釋抗體
濃度,才不會有背景全黑的現象,也可為實驗室節省抗
體用量。然而一旦發生這樣的現象,也可以先簡單稀釋
抗體濃度即可有效降低雜亂的背景值,避免黑漆漆的尷
尬data,也可以節省抗體用量達到節省經費的效果喔! 圖2、左邊為正常的結果,右邊則背景過高,無法分辨訊號
圖3、增加抗體稀釋倍數可有效降低背景值。
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封面故事 - 搞定 Western Blot 六大問題
原因2: HRP聚集成團
此外,如果使用保存過久的二抗也會有斑點型的背景產生,主要原因是因為 HRP 會聚集在一起,因此在呈色
時會有訊號不平均或是斑點型
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