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ELISPOT 技术
在免疫学领域中,对于疾病以及疫苗研究不仅仅局限于体液免疫应答,细胞介导
的免疫应答(cell mediated immune response , CMI)也是人们所关注的,而T细
胞在 CMI 中起关键作用。在研究细胞免疫应答保护作用及其机理方面,有多种研
究方法可以使用,如: ELISA (酶标记免疫附测定法,enzyme-linked
immunosorbent assay )、流式细胞分析术(flow cytometry )、定量RT-PCR
以及这里要介绍的近年使用越来越多的 ELISPOT。作为一项新型的免疫酶技术
——酶联免疫斑点法(enzyme linked immunospot assay, ELISPOT) ,是从单细
胞水平检测分泌抗体细胞(ASC) 或分泌细胞因子(CK) 细胞的一项细胞免疫学
检测技术。由于该方法敏感性高,易操作,成本相对流式细胞分析术也较低,已被
广泛用于分泌 CK 细胞检测或 ASC 测定中。下面将从原理、具体实验操作、技术
优势和应用几方面进行介绍。
原理
ELISPOT就其原理来说实在是很简单的,从本质上说和ELISA的原理是一样的,理
解起来并不难,关于ELISA的工作原理可看酶联免疫吸附实验(ELISA)【1】。传统的ELISA
与ELISPOT都是根据酶免疫学检测原理,通过酶的高催化频率,放大反应效果,从
而达到很高敏感度的检测效果。
如图所示,反应步骤可大致分为:
1. 利用特定细胞因子的单克隆抗体 包被96孔板,
封闭剩余的空白位点
2. 加入细胞悬液,用特异性抗原刺激、活化细胞,
产生细胞因子,细胞因子会往附近扩散与之前包
被的抗体进行特异结合
3. 洗掉细胞
4. 加入酶标二抗特异与细胞因子进行结合,通过底
物的显色反应,一个细胞所在位置就会显出斑点,
最后利用显微镜或者特定的读板机(reader)就
可以计算出样品中被激活细胞的数目
以上是检测分泌细胞因子细胞的流程,如果是检测分泌
特异抗体的细胞只需把包被特异抗体变为包被特异抗原
即可。
具体实验操作
从原理上看ELISPOT的确很简单,但是在操作过程中有许多条件需要摸索,所以
这里进一步介绍一下ELISPOT的操作步骤。
I. 将适量捕获性抗体预先包被于96孔ELISPOT板上,用胶带封板并在4℃孵
育过夜。将板用PBS洗6遍,再用含体积比10%胎牛血清(FCS)的培养基封
闭,室温下孵育至少 1h。FCS 可以封闭所包被抗体的 FCS 受体以降低非特
异性反应。有一种特殊的96孔板底面介质是PVDF膜,利用膜的多孔结构
可以让单个细胞坐到其中,然后分泌细胞因子或特定抗体,这样使最后的
检测单个细胞灵敏度成为可能。同时,PVDF 膜的不透光性也是 ELISPOT
与ELISA的不同之处。理论上是可以同时包被两个不同的抗体的,两种不
同的抗体可以利用不同的显色系统显出不同颜色,但是这样就要考虑到不
同抗体间的不亲和性,必需保证每种抗体包被的数量要足够。如果是使用
试剂盒的预包被板,这一步就可以省略啦。
II. 将阴性对照和细胞样品,如外周血单核细胞 (peripheral blood
mononuclear cell, PBMC) ,经纯化的CD8+T细胞或去除某种特异细胞群的
4 5
PBMC,用含 10%FCS的培养基稀释至 5×10 ~2×10 个/孔如果条件可以达
到更高的细胞数,建议可以尝试 3×105 5
~5×10 个/孔,特别是在分泌细
胞),分装于ELISPOT板孔中,再加入特异的刺激物,如多肽或基因表达产物,
提取的抗原等,阴性对照孔中只加入培养基(实验中最好采用无血清的培
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