胃癌标本的正确固定许.ppt

组织处理不良示例 未剪开固定 固定液比例不足 组织处理规范示例 剪开手术标本 供图：绍兴市人民医院病理科 组织处理规范示例 钉于标本板上 供图：绍兴市人民医院病理科 组织处理规范示例 供图：绍兴市人民医院病理科 组织处理规范示例 浸泡于足量的固定液中 供图：绍兴市人民医院病理科 组织处理规范示例 准确记录离体时间和固定(开始)时间 供图：绍兴市人民医院病理科 30分钟内： 应当完成什么？ 应当由谁完成？ 需要的哪些材料？ 应当根据医院的实际情况，由手术室和病理科协商决定 如标本能于离体后30min内送至病理科并完成处理，可以建议由病理科完成 如标本不能于离体后30min内送至病理科并完成处理，可以建议在手术室完成 30分钟内： 应当完成什么？ 应当由谁完成？ 需要的哪些材料？ 10%中性缓冲福尔马林溶液 即 4%中性缓冲甲醛溶液 中性（pH7.2 – 7.4） 避免酸性环境对组织和抗原造成的破坏 用自来水或纯水配置的甲醛溶液，常见pH5 – 7，可能使分子标志物检测的阳性率显著降低，导致误诊 缓冲体系： 避免外界物质（如胃酸等）造成固定液pH值显著变化 ，进而对组织和抗原造成的破坏 容器 ? ? ? 其他 如标本板，大头针，手术剪等 患者 技术员 肿瘤科医生/消化科医生 病理科医生 外科医生/内镜医生 组织切除，固定及送检前保存 标本处理及检测手段 检测结果分析及报告 申请标本检测及 安排标本收集 HER2检测需多学科间共同合作 总结 手术标本应及时剪开固定 应使用正确、足量的固定液 应准确记录立体时间和固定时间 外科和病理的合作至关重要 * 切除10例可触及的浸润性乳腺癌标本后立即进行粗略评估，然后把获得的每一例肿瘤标本都平均分为8份，其中7份依次于0 min、10 min、30 min、l h、2 h、4 h和8 h后行甲醛固定，另外一份置于生理盐水中并在4℃下过夜。分别用免疫组化和荧光原位杂交技术对ER、PR和HER2进行检测。其中ER、PR采用Q值法评估。 对Q值≥6的样本分析其表达强度随固定延迟时间的变化。这lO例浸润性导管癌中，5例ER和4例PR的Q值≥6，ER、PR的Q值平均值开始下降分别是在延迟2h和lh固定，Q值出现最低值分别是在8h和过夜后。 * 共纳入97例乳癌患者。 * 与P5同一文献。 延迟甲醛固定达30 min没有影响HER2 FISH检测结果，延迟1h后3例受到影响，而延迟2h后则有6例受影响(p0.03)，延迟4h后有8例受影响(p0.008). * 切除10例可触及的浸润性乳腺癌标本后把获得的每一例肿瘤标本都平均分为8份，依次在切除后0、10和30 min，1、2、4和8 h固定。 * 切除10例可触及的浸润性乳腺癌标本后把获得的每一例肿瘤标本都平均分为8份，依次在切除后0、10和30 min，1、2、4和8 h固定。 EGFR和E-cadherin表达水平自延迟固定2h起开始下降 * 切除10例可触及的浸润性乳腺癌标本后把获得的每一例肿瘤标本都平均分为8份，依次在切除后0、10和30 min，1、2、4和8 h固定。 Graph showing DFF effect on Ki-67. Note the minimal decline at 4 and 8-hour mark for Ki-67表达水平在4 h和8 h出现下降 in both analyses * 52例侵袭性导管癌患者的活检和手术切除标本。研究者计数10个具代表性的高倍视野下的有丝分裂象，并进行定量MIB-1免疫组化检测。 结果发现，手术切除标本的有丝分裂象较活检标本平均高出三倍多(20±6 vs 6±2 有丝分裂/10个高倍视野, P=0.008)；且明显向中期转变。而两者间MIB-1免疫染色的肿瘤细胞比例则相当。 研究者得出结果，即手术切除标本有丝分裂象增加源自固定延迟，活检标本自离体至固定的时间为15~30 min,而手术切除标本则需数个小时。 每根线代表每例侵袭性导管癌患者。 * 胃癌固定较差组织进行免疫组化检测： 1.固定不完全会导致假阳性检查结果 2.细胞质染色可能由于使用了不适当的固定方式 肿瘤科医生，外科医生，病理医生与技术人员形成一个多学科治疗组以确保乳腺癌和胃癌患者能获得适当的诊断和治疗例如抗HER2治疗。 该图显示多学科检测治疗小组成员相互的协作，共同确保HER2检测的可靠性与可重复性，以及检测结果分析的正确性。 肿瘤医生/消化科医生应确保对乳腺癌及胃癌患者进行常规HER2检测申请。 外科/内镜医生应确保肿瘤组织被有效切除，正确定向及在送检前使用10%甲醛合理固定。 技术员应严格遵守检测步骤对标本进行检测。 病理医生应根据经验证的检测方法对检测结果正确