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酵母转化常用培养基及程序
酵母实验操作方案
一.质粒酶切及线性化
1)用维特洁日常型小量DNA纯化试剂盒抽提9KSF2,可得到较纯的质粒10μg/3ml菌液,终体积80ul。
2)线性化质粒
使用80μl酶切体系
9KSF2质粒?????????????????? 70μl
内切酶(SacI, SalI, Bgl)???? 2μl
10 x buffer????????8μl
3)酶切3-16小时,一般3小时即可;
二.乙醇回收酶切质粒
1)2倍体积无水乙醇和0.1倍体积的3M NaAC(PH 5.2),混匀,沉淀DNA;
2)-200C数个小时(2小时),13,200rpm离心10~20分钟,吸弃上清;
3)300ul 70%乙醇洗一次,13,200rpm离心10分钟,吸弃上清(注意离心管位置,从含有DNA的离心管另一侧吸取);
4)37烘干水分和残留乙醇;
5)用20μl ddH2O重溶;
6)1ul样品电泳检测DNA量,计算DNA总量;
三.电转化
1.准备感受态细胞
1)5ml YPD 接种GS115单菌落,250rpm,300C,摇菌24 hours;
2)100ml YPD,接种百分之一,同时留1ml空白YPD,300C ,250rpm,7~8hours,直到OD600=1.3~1.5;
3)菌液转入500ml离心管,JA14,1500g,40C离心5 min,弃上清;
4)100ml冰水重悬,同上离心,弃上清;
5)80~90ml冰水重悬【50ml】,同上离心,弃上清;
6)20ml冰1M sorbitol 重悬【5ml】,然后转移到50ml 离心管中,同上离心,弃上清;
7)约150μl 1M sorbitol重悬【250ul】,40C备用,剩下的感受态细胞可以保存在-700C冰箱大约3周。2.转化
1)100μl GS115感受态细胞加入+20μl 线性化质粒,用枪打匀;
2)冰浴5min,加入0.2cm转化杯中,轻轻将液体震到杯底,立即冰浴;
3)?电转化,参数设定:电压 1500V?? 电容 25μF?? 电阻 200欧姆,放电时间 4~5ms
4)立即加650μl 冰 1M sorbitol 入转化杯,打匀;
5)?迅速涂板,250μl/块 MD板,共3块; 6)?涂好的板放在300C培养箱中培养4~5天,至菌落直径1mm即可。注:
a)【】内为手册推荐量,相关文献报道,转化效率一般为103~104 / ugDNA,所需质粒量0.3-10ug不等;
b)放电是可好出现电击穿现象,原因有:酵母浓度不够;DNA溶液离子浓度过大;混合液体积不够; c)MD板加入1M sorbitol ,转化时第2)步冰浴时间延长至1-2小时,均有利于提高转化效率
四.G418筛选多拷贝基因
1)取出长有克隆的3块板,可考虑先挑10-20个菌落先表达;
2)第一块加入2ml 灭菌的ddH2o,用涂布棒打匀,洗后,菌液吸入第二块;
3)第二块加入1ml,洗之,吸入第三块;
4)菌液吸入EP管,可适量补充ddH2o;
5)混匀后取适量稀释约50倍,4ul×50=200ul每块G418板,G418浓度从0.25-4.0mg/ml各一块;
6)注意涂布均匀,可适量补充ddH2o,
7)300C烘箱培养,2-5day,其余菌液可40C保存
注:
a)手册推荐方法:第4)步将菌液转入EP管中,振荡5-10秒,用分光光度计测菌体密度,1OD600=5×107 cells/ml, 取一定体积稀释至200ul/每块G418板, 涂布~105 cells;注意agar的存在会干扰分光光度计的读数。
五.表达:
1)从G418板挑单克隆入4ml/管MGY接种,300C,250rpm,2天左右至OD=2-6,颜色乳白;
2)取1ml菌液于EP管中保种,余3ml菌液离心,1500g,5min,菌体换3ml BMMY,加千分之五甲醇,300ul/管;
3)每隔24小时加千分之五甲醇;
4)至表达之日起2天后每天取样80ul,留作电泳分析;
5)表达4天结束,1500g离心,5min,分别收集上清和沉淀;
6)上清用作蛋白分析,跑SDS电泳,Western Blotting分析,ELISA分析,样品浓缩,纯化分析等 附录一?? 培养基
LB:
???????????? Tryptone???????????? 10g??????? 1%
???????????? Yeast Extract???? ?? 5g????????? 0.5%?????
???????????? NaCl????????????????? ?? 5g????????? 0.5%
?????????
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