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如提取DNA分子时应去除RNA反之亦然
核酸提取操作与含量测定 找答案…… 核酸分离提取的原则是什么?要达到哪些要求? DNA和RNA提取总需要注意的要点有哪些? 核酸如何定量测定,简单说说它们的依据呢? 前言 ③ 防止核酸的生物降解。细胞内或外来的各种核酸酶水解核酸链中的磷酸二酯键,直接破坏核酸的一级结构。 其中DNA酶需要金属二价阳离子Mg2+,Ca2+的激活,因此使用金属离子螯合剂,如EDTA或柠檬酸盐等基本上可以抑制DNA酶的活性 而RNA酶不但分布广泛、极易污染样品,而且耐高温、耐酸碱、不易失活,所以生物降解是RNA提取过程中的主要危害因素; 高温,如长时间煮沸,除水沸腾带来的剪切力外,高温本身对核酸分子中的某些化合键也有破坏作用。 核酸提取过程中常规操作温度为0~4℃以降低核酸酶的活性从而减少对核酸的生物降解。 DNA提取的几种方法 DNA提取的几种方法 基因组DNA- CTAB法 CTAB提取缓冲液的经典配方 基因组DNA- CTAB法 基因组DNA- CTAB法 基因组DNA-SDS法 基因组DNA-SDS法 基因组DNA-其它方法 物理方式:玻璃珠法、超声波法、研磨法、冻融法 化学方式:异硫氰酸胍法、碱裂解法 生物方式:酶法 基因组DNA-其它方法 吸附材料结合法: 基因组DNA-其它方法 浓盐法: 有机溶剂抽提法: 密度梯度离心法: 细胞器DNA-差速离心法 DNA提取的基本步骤 材料准备 细胞裂解 核酸分离、纯化 核酸分离、纯化 核酸分离、纯化 核酸分离、纯化 核酸沉淀、溶解 DNA提取常见问题 DNA提取常见问题 DNA提取常见问题 RNA提取的通用方法 异硫氰酸胍/苯酚法 影响RNA提取的因素 影响RNA提取的因素 RNA提取常见问题 RNA降解 RNA降解 OD260 /OD280 比值偏低 苯酚残留: 不要吸入中间层及有机相,加入氯仿后首先混匀,并且离心分层的离心力和时间要足够。 解决办法:重新抽提一次,再沉淀,溶解。 OD260 /OD280 比值偏低 电泳带型异常 下游实验效果不佳 DNA中含有蛋白、多糖、多酚类杂质 DNA在溶解前,有酒精残留,酒精抑制后续酶解反应 DNA中残留有金属离子 重新纯化DNA,去除蛋白、多糖、多酚等杂质(具体方法见前) 重新沉淀DNA,让酒精充分挥发 增加70%乙醇洗涤的次数(2-3次) 问题一:DNA样品不纯,抑制后续酶解和PCR反应。 原因 对 策 材料不新鲜或反复冻融 未很好抑制内源核酸酶的活性 提取过程操作过于剧烈,DNA被机械打断 外源核酸酶污染 反复冻融 尽量取新鲜材料,低温保存材料避免反复冻融 液氮研磨或匀浆组织后,应在解冻前加入裂解缓冲液 在提取内源核酸酶含量丰富的材料的DNA时,可增加裂解液中螯合剂的含量 细胞裂解后的后续操作应尽量轻柔 所有试剂用无菌水配制,耗材经高温灭菌 将DNA分装保存于缓冲液中,避免反复冻融 问题二:DNA降解。 对 策 原因 实验材料不佳或量少 破壁或裂解不充分 沉淀不完全 洗涤时DNA丢失 尽量选用新鲜(幼嫩)的材料 动植物要匀浆研磨充分;G+菌、酵母裂解前先用生物酶或机械方式破壁 高温裂解时,时间适当延长(对于动物细胞、细菌可增加PK的用量) 低温沉淀,延长沉淀时间 加辅助物,促进沉淀 洗涤时,最好用枪头将洗涤液吸出,勿倾倒 问题三:DNA提取量少。 对 策 原因 RNA提取的通用方法 异硫氰酸胍/苯酚法 原理: 细胞在变性剂异硫氰酸胍的作用下被裂解,同时核蛋白体上的蛋白变性,核酸释放; 释放出来的DNA和RNA由于在特定pH下溶解度的不同而分别位于整个体系中的中间相和水相,从而得以分离; 有机溶剂抽提,沉淀,得到纯净RNA。 步骤: 材料准备:尽量新鲜。 裂解变性:异硫氰酸胍。使细胞及核蛋白复合物变性,释放 RNA,有效抑制核酸酶。 纯化分离:苯酚,氯仿,异戊醇。苯酚/氯仿可抽提去除杂物。 洗涤:70%乙醇。 沉淀:异丙醇、无水乙醇。 乙酸钠(pH4.0):维持变性的细胞裂解液的pH值,沉淀RNA 此外还常用氯化锂选择沉淀RNA。 影响RNA提取的因素 材料: 新鲜,切忌使用反复冻融的材料 如若材料来源困难,且实验需要一定的时间间隔。可以先将材料贮存在TRIzol或样品贮存液中,于-70℃或-20℃保存 如要多次提取,请分成多份保存 液氮长期保存,-70℃短期保存 影响RNA提取的因素 样品破碎及裂解: 根据不同材料选择不同的处理方法: 培养细胞:通常可直接加裂解液裂解 酵母和细菌:一般TRIzol可直接裂解,对于一些特殊的材料可先用酶或者机械方法破壁 动植物组织
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