毛细管电泳(CapillaryElectrophoresisCE).ppt

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毛细管电泳(CapillaryElectrophoresisCE)

第十三章 毛细管电泳 ( Capillary Electrophoresis, CE ) 第一节 概述 早在一百多年以前,较原始的电泳实验,是在一个U形一管中进行的,管中盛有溶液,两端置有电极,加上几百伏电压后,首次实验了对毒素和抗毒素的分离。1909年,L.Michaelis提出“电泳”这一术语,他的实验是用于测定蛋白质的等电点。 此后,许多的研究报告涉及氨基酸、肽类、蛋白质的分离。为了防止电泳完成了的溶液中,再次发生对流混合,曾使用了各种稳定介质,如琼脂、纤维粉、玻璃丝、硅胶及丙烯酸胺; 为了防止热扩散而使用了一种内径小的管道,管道内径由3mm缩小至75μm。1981年,Jorgenson.和Lukacs 使用75μm内径的熔融石英毛细管,电泳分离氨基酸和肽。至此,出现了毛细管电泳(capillary electrophoresis,CE)技术。 毛细管电泳,又称高效毛细管电泳 (High Performance capillary electrophoresis,HPCE), 它不同于经典的区带电泳,有如下特点: (1)它是在内径(10~200)μm的石英毛细管中进行的,在毛细管中的散热较好,沿着管截面的温度梯度很小,因此,可以提高加在毛细管两端的电压,所加电压可高达几十千伏。 (2)它不需要阻流介质,但可使用凝胶作分子筛介质。 (3)可使用在柱检测法,缩短分析时间,结合计算机处理数据,可实现自动化操作。 (4)灵敏度高,检测限可达(10-13~10-15)mol,使用激光诱导的荧光检测限可达(10-19~10-21)mol。 (5)分辨率高,理论塔板数为几十万至几百万/米。 (6)取样量少,有时只需几个纳升(nL,10-9L),流动相只需几毫升。 第二节 高效毛细管电泳的基本原理 溶质在毛细管区带电泳过程中的传递 含离子的溶液,在电场中所发生的物理过程服从欧姆定律,当有直流电通过溶液时,阴离子向阳极迁极,阳离子向阴极迁移,溶液的导电率取决于离于浓度和其迁移率(又称淌度,即指溶质在单位时间和单位电场强度下移动的距离)。离子迁移率以μ表示,其大小受溶质的电荷/离子大小比例所控制。 在电场的影响下,带电荷的质点受到的力Fe,等于其净电荷q与电场强度E的乘积,即Fe = q×E。电场强度E以每单位长度所加的电压U来表示,即E=U/L,其中L是毛细管长度。Fe对正电荷为正值,对负电行为负值。 电场力促使带电质点向两极移动,质点在移动过程中,也受到一种与电场力方向相反的阻滞力Fd,阻止其移动,此阻滞力与质点的电泳速度υ成正比,由下式结出 Fd =f×υ 式中,f是质点平移动所受的摩擦阻力,对小的球状物质点,可用斯托克斯(Stokes)定律表示,即: f=6πηr 式中,η是溶液的粘度,r是离子半径。即摩擦阻力正比于溶液的粘度、质点大小和其电泳速度。由于存在摩擦阻力,一种带电质点在电场中运动,被加速到一有限速度,此速度取决于Fe和Fd,这一有限速度称为电泳速度,υep 。当促进力与阻滞力达到平衡时,则 υep =q·E/f 将上述表达式合并,作为电泳迁移率(或电泳 淌度)μep 。表示式,则 μep=υep/E=q士/6πηr 电泳迁移率定义为:一种质点在每单位电场强 度下的稳态速度。 μep 值的大小,取决于分子的净电荷数及其摩擦性质,(分子大小和形状)以及所用介质的介电常数ε和粘度η。因而,对于每一种质点,在电场作用下的迁移均具有特定的速度。 对于大分子或胶体,其关系可表示为 HPCE分离,几乎都是在熔融石英毛细管中完成的,熔融石英是一种高度交联的SiO2聚合物,具有很好的抗拉强度。石英毛细管表面含有许多硅酸基(Si—OH),在一定的条件下可离解。使表面带有负电荷。 由于表面带负电,因此,带负电荷的离子被表面排斥,而带正电均离子则被毛细管壁

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