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检验科标本采集与质量控制 医学检验科 夏 云 标本采集总则 标本采集是实验室分析前质量控制中最重要的环节，必威体育精装版研究表明分析质量缺陷大多数是由标本采集过程的不规范引起，因此在标本采集过程中应注意下列事项： 1.了解标本采集前影响结果的非病理性因素，如饮食、标本采集时间、体位和体力活动、病人用药等对检验结果的影响 ，取得患者的配合，正确地进行病人准备。 2.认真执行查对制度，核对病人信息、医嘱，选择恰当的容器，用扫描器扫描标本条码，系统自动记录采样人和时间登记确认；注意打印送检清单。 3、按相应标本采集的作业指导书采取适当的样品量，尽可能采集病变明显部位的材料 ； 4、微生物培养标本应尽量在应用抗生素之前采集，并注意避免正常菌群的污染； 5、标本采集后应尽快送检（2小时内）； 6、遵守生物安全防护的要求。 常规检验项目真空采血管的选择 真空采血管种类 检测项目 采血要求 橘红色盖 平诊生化项目 4ml 红色盖 免疫项目：病毒性肝炎标志物、自身抗体 、梅毒等 4ml 灰色盖 血糖、葡萄糖耐糖试验 2ml，立即颠倒混匀 紫色盖 （K2EDTA抗凝管） 血常规、网织红细胞、疟原虫、微丝蚴、脑脊液常规、胸腹水常规等 顺畅采血1ml，立即颠倒混匀10次 蓝色盖短管（枸橼酸钠抗凝管） 凝血象、DIC全套、血沉 采血至刻度，颠倒混匀 绿色盖（肝素钠抗凝管） 急诊生化、超级淋巴细胞亚群 采血至刻度，颠倒混匀 采血多管样本的采集顺序 血培养 蓝盖 红盖 橘黄盖 绿盖 紫盖 灰盖 血培养 常见标本采集 1.静脉血采集 ：按静脉穿刺标准操作； 2.动脉血采集 ：选择股动脉、肱动脉或桡动脉穿刺点，经皮肤消毒后，用动脉采集专用针穿刺动脉血管，当动脉血压力推动空针活塞采集所需动脉血后（血气分析2-3ml）。用小橡皮封针头并立即拔出针头，用绿头盖密封注射器以隔绝空气，立即将注射器放在手中双手来回搓动混匀防止凝固，并立即送检。 3.浆膜腔积液 、脑脊液采集 ：由医生操作，采集标本分三管留取，每管１-２ml。 第一管：供细菌学检查，必须置于无菌管中 ； 第二管：供化学及免疫学检查（红色或橘红色盖真空负压试管中） ； 第三管：供细胞学检查（置于紫色盖的真空负压试管中） 4.尿液采集 ：应清洁外阴和尿道口，留取新鲜中段尿，以清晨第一次尿5-10ml为宜。急诊和门诊病人可随时留取中段尿 。 应避免经血、白带、精液、粪便等混入 ； 尿培养项目应用无菌容器； 标本采集后立即送检，避免细菌繁殖、细胞溶解等； 5.大便采集 ：选取脓血黏液等不正常大便约5克（指头大小）立即送检 。 检查阿米巴滋养体，应排便后迅速送检。冬季需采取保温措施； 大便细菌检验用标本应全部用无菌操作收集 。 临床常见检验项目 标本采集的注意事项 血常规、血沉检验 1.用紫色头（血常规）、黑色头（血沉）真空负压管采集空腹静脉血至2ml。采集后尽快送检 ； 2.采血后轻轻颠倒混匀8-10次，让血液与抗凝剂充分混合。避免剧烈振摇 ，防止标本溶血 ； 3.标本采集时不能从输液管中放血，也不能在输液部位的同侧静脉采血 ； 4.标本室温保存不得大于4小时； 5.采血前应使患者尽量减少运动以保持平静。 网织红细胞、疟原虫、微丝蚴 1.用紫色头真空负压管采集静脉血至2ml，采血后轻轻颠倒混匀8-10次尽快送检； 2.微丝蚴采血时间以夜间21：00-24：00时前后为宜 ； 3.疟原虫检查采集时间：疑为间日疟及三日疟患者，应在发作后数小时至10小时左右采血；疑为恶性疟患者，应在发作后20小时左右采血。 凝血试验 1.用蓝色头真空负压管采集空腹静脉血至血液不能自行流出为止； 2.采血后应充分混匀（颠倒混匀十次），避免剧烈振摇，避免有凝块和组织液的渗入； 3.标本量不准确对结果有影响； 4.严重贫血或细胞比例过多的病人，需校正采血量（与检验科联系）。 血流变 绿色的真空负压管采集空腹脉血4ml，轻轻颠倒混匀，人体血液黏度存在波动性和昼夜节律性，为使检测结果具有可比性，建议在固定时间抽血。 尿液标本量收集不足（右侧） 临床化学/免疫检测项目 1.避免溶血、脂血； 2.部分药物、严重黄疸可影响检测结果； 3.不能从输液管中或输液的同侧采集； 4. 24小时尿检测：上午8时排尿一次，将膀胱排空，弃去尿，此后收集各次排出的尿，于4℃保存。直到次日上午8时最后一次排尿的全部尿，混匀后，收集5-10 ml于清洁容器内，并注明尿量。 急诊标本的采集 急诊标本的试管上应贴上红色“急”字标签； 急诊标本采集后应立即送检。 临