痰培养质量控制-简易PPT.ppt

痰培养质量控制 主要内容 痰培养质量控制重要性 痰培养分析前质量控制 痰培养分析中质量控制 痰培养分析后质量控制 痰培养质量控制重要性 痰培养是中国的特色，痰培养（尤其是定量或半定量培养）阳性及阴性均有临床指导价值。 痰培养取标本时质量控制难度大，易受上呼吸道正常菌群污染，定植菌的干扰，难以判断定植或是感染。 引起下呼吸道感染的病原菌种类繁多，而能够在常规培养基（血平板、麦康凯和巧克力平板）上生长的仅为部分需氧或兼性厌氧菌。 造成痰培养的局限性：虽然送检率高，但合格率低。 结果判读标准不好统一。 规范标准操作留取痰标本的重要性：分析前实验室质控，分析前因素导致误差为50％左右。 痰培养分析前质量控制 细菌检验的全面质量管理是一个连续的质量管理过程。室内质控工作应以检验前、检验中、检验后、质量的全面管理为框架，其中分析前的质量管理最为重要。 分析前期，它分为实验室内及实验室外两个环节。即： 分析前实验室外质量管理 分析前实验室内质量管理 痰培养的送检指征： 咳嗽、咯血：咳痰，痰呈脓性、粘稠或血性，可伴有胸痛、气急、甚至呼吸困难，肺部可闻及湿罗音。 发热伴白细胞升高：包细胞总数和中性粒细胞比例明显增高，甚至核左移;或CRP明显增高。 胸部影像学检查提示有感染可能：X线检查提示肺部有炎症性浸润或胸腔积液等，严重者可导致感染性休克和呼吸衰竭。 标本采集： 标本采集应在临床工作人员指导（直视）下进行，并尽可能在抗菌药物使用之前采集。有以下几种方法： 1.自然咳痰法 1.1晨痰最佳。咳痰前指导病人用无菌生理盐水、温开水充分漱口，有假牙者应取下假牙。 1.2指导病人深呼吸数次后，用力深咳，咳出的深部痰直接吐入无菌、干燥的广口带盖容器中，标本量≥1ML。不要在口腔中停留。 2.诱导痰（痰量少，无痰或咳痰困难者） 2.1用湿牙刷和无菌生理盐水，漱口腔黏膜、舌头和牙龈约5分钟，勿用牙膏;再用无菌生理盐水漱口； 2.2用超声雾化器，是患者雾化吸入加温至45℃的3％~5％Nacl水溶液约20-30ml，是痰液易于排出，用无菌杯收集诱导痰标本。 3.气管镜标本采集法 由临床医生按相应操作规程采集。气管镜标本包括支气管肺泡灌洗液标本（BAL）、支气管灌洗液、保护毛刷标本（PSB）、支气管穿刺活检标本。 取此类标本顺序应为： A.支气管灌洗液和支气管肺泡灌洗液标本（BAL）： B.毛刷标本和活检标本： 操作中避免将血带入收集液中；标本量应大于1ml；为防止污染，尽可能采用吸入麻醉剂为佳。 4.小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子伸入咽部，小儿经压舌刺激咳嗽时，可喷出肺部或器官分泌物粘在拭子上送检，由临床医生采集。 标本运送： 用防漏无菌杯收集标本，贴好标本信息（条码）。 尽快送检，须在2小时内运送到微生物实验室。 痰培养不能及时接种的，储存条件为4℃环境，储存时间不应超过24小时。 晨痰如果在两小时之内不能送检或接种应考虑送随机痰（痰液留取后不能及时送检，降低了苛养菌的分离率）。 原则：保持细菌活力，否则应拒收。 标本验收及拒收原则： 无标签者拒收。 标本信息不全、不符者拒收。 送检时间超过2小时拒收。 送检容器不当、溢漏、无盖者拒收。 痰标本呈水样或唾液样，有明显实物残渣、灰尘纸屑者拒收。 不建议24小时内多次采集送检标本，除非痰液外观性状出现变化，否则需要与申请医师协商处理。 痰培养分析前实验室内质量控制 1.肉眼观察 观察痰液的颜色、粘度、有无血丝和是否呈脓性，可推测肺炎类型：如见有颗粒，则应注意可能与放线菌属及奴卡菌属感染有关。 2.标本预处理： 2.1洗痰：于痰标本中加入适量（约10ml）无菌生理盐水，剧烈振荡5~10s后，将生理盐水弃去（反复两次），可洗去痰中正常菌群。留下沉淀于管底的浓痰。 2.2向洗涤过的痰液中加入等量PH7.6的1％胰酶溶液，放置37℃培养90min，使痰液匀质化后备用。 建议以细胞学筛选代替洗痰。 3.痰涂片革兰染色镜下观察：用无菌拭子挑去处理过的痰标本或挑去有代表性的痰标本均匀涂抹于清洁的玻片上，待干、固定、染色和镜检。 痰培养分析前实验室内质量控制 痰外观 可能的肺炎类型 脓性 典型肺炎 粘液状 非典型肺炎 铁锈色 肺炎链球菌 绿色 铜绿假单胞菌或流感嗜血杆菌 粘稠果冻样 肺炎克雷伯菌 大量血 空洞型肺结核、肺脓肿 难闻气味 厌氧菌性肺炎 痰标本镜下分类（细胞数/低倍镜） 分级 上皮细胞（个） 白细胞（个） 判定 A ＜10 ＞25 合格，可用于细菌培养 B 10-25 ＞25 混合样本，若比值＜1:2.5为基本合格，可用于细菌培养 C ＞25 ＜10 不合格，建议重送标本 痰涂片镜下观察注意点： 白细胞内吞噬细菌与感染相关度高。 粘液丝缠绕或包裹的细菌可能为目的菌。 与白细胞伴行的