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; 本课题学习目标; 2003年4月14日宣布人类基因组序列图完成,这标志着进入了后基因组和蛋白质组时代;血液;血红蛋白;1.分离生物大分子的基本思路:;(一) 凝胶色谱法(分配色谱法);4.凝胶色谱法分离蛋白质的原理和具体过程; (三) 电泳:;; 聚丙稀酰胺凝胶电泳; 蛋白质在聚丙烯酰胺凝胶中的迁移率取决
于它所带净电荷的多少以及分子的大小等因素。
(SDS的作用)为了消除净电荷对迁移率的影响,
可以在凝胶中加入SDS。
;用SDS测定蛋白质分子量的方法; 二、实验操作;(2)血红蛋白的释放:;甲苯层(无色透明);(4)透析:;透析过程动画演示;2.凝胶色谱操作:; (2)凝胶色谱柱的装填; ;(3)样品加入与洗脱;(3)样品加入与洗脱;思考下面的问题:;(三)SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳; 1、由于制备凝胶的丙烯酰胺和双丙烯酰胺具有很强的神经毒性,并且容易被皮肤吸收,因此操作必须在通风橱内或通风处进行。
2、TEMED和过硫酸胺对黏膜和上呼吸道组织、眼睛、皮肤等有很大的破坏作用,吞服可致命。
3、在进行电泳操作时一定按照实验要求和步骤完成。操作时要戴好一次性手套。; ① SDS-聚丙烯酰胺分离胶制备:用去离子水4.6 mL,30%的丙烯酰胺2.7 mL,1.5mol、pH 8.8的Tris缓冲液2.5 mL,10%的SDS 0.1 mL,10%的过硫酸胺0.1 mL,TEMED 0.006mL,混合均匀,迅速灌注在两玻璃板的间隙中间,要留出灌注浓缩胶所需空间(梳子的齿长再加0.5 cm),再在胶液面上小心注入一层水(约高2—3 mm),以阻止氧气进入凝胶溶液。②分离胶聚合完全后(约30 min),倾出覆盖水层,再用滤纸吸净残留水。③配制SDS—聚丙烯酰胺凝胶电泳浓缩胶溶液用去离子水2.7 mL,30%的丙烯酰胺0.67 mL,1.0 mol、pH 6.8的Tris缓冲液0.5 mL,10%的SDS0.041 mL,10%的过硫酸胺0.04 mL,TEMED 0.004 mL,混合均匀,直接灌注在聚合的分离胶上,并立即在浓缩胶溶液中插入干净的梳子。整个操作过程应注意避免气泡的产生。然后再补加浓缩胶溶液,使其充满梳子之间的空隙,将凝胶垂直放置于室温下聚合。;(3)样品处理:在电泳样品中按1∶1体积比加入样品处理液,在100 ℃温度下加热3 min,以使蛋白质变性。(4)浓缩胶聚合完全后(30 min),小心移出梳子。把凝胶固定于电泳装置上,上下槽各加入Tris—甘氨酸电泳缓冲液。必须设法排出凝胶底部两玻璃板之间的气泡。(5)加样:按顺序加样,加样量通常为10—25 μL。样品可以多加几个,例如,血浆样品红细胞破碎后(即进行凝胶色谱分离之前)的样品和凝胶色谱分离之后的样品(6)电泳:将电泳装置与电源相接,凝胶上所加电压为8 V/cm。当染料前沿进入分离胶后,把电压提高到15 V/cm,继续电泳直至溴酚蓝到达分离胶底部上方约1 cm处,关闭电源。(7)剥胶:从电泳装置上卸下玻璃板,用刮刀撬开玻璃板。将紧靠最左边一孔(第一槽)凝胶下部切去一角,以标注凝胶的方位。(8)染色:将电泳凝胶片放在考马斯亮蓝染色液中染色1-2 h。(9)脱色:染色完毕,倾出染色液,换脱色液脱色3-10 h,其间需多次更换脱色液至背景清楚。(10)观察结果:SDS电泳的成功关键之一是电泳过程中,待别是样品制备过程中蛋白质与SDS的结合程度。; 观察你处理的血液样品离心后是否分层(见教科书图5-18),如果分层不明显,可能是洗涤次数少、未能除去血浆蛋白的原因。此外,离心速度过高和时间过长,会使白细胞和淋巴细胞一同沉淀,也得不到纯净的红细胞,影响后续血红蛋白的提取纯度。; 如果凝胶色谱柱装填得很成功、分离操作也正确的话,能清楚地看到血红蛋白的红色区带均匀、狭窄、平整,随着洗脱液缓慢流出;如果红色区带歪曲、散乱、变宽,说明分离的效果不好,这与凝胶色谱柱的装填有关。;广东省兴宁市水口中学 陈国雄
电子信箱: cgx7302@163.com
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