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实验生物显微制片技术

实验九 生物显微制片技术 综合性,12h 实验目的与要求 1.理解石蜡切片法各主要步骤的基本原理。 2.掌握各种试剂的配制和各种器材的使用方法。 3.掌握石蜡切片法的具体操作方法。 4.熟悉实验过程中应注意的事项。 5.自己取材,植物、动物材料制备标本片。 6.通过在显微镜下观察鱼肝细胞染色玻片标本,了解鱼肝细胞的显微结构。 生物制片技术概述 生物显微制片技术是观察研究细胞、组织、胚胎、动物等的形态、结构及病理变化的重要方法。由于生活时的生物体器官组织过大或过厚不能在光学显微镜下观察,或者能放在光学显微镜下,光线也不能透过,而且一些微细结构的折光率相同,即使光线能够透过也看不清楚。因此,就必须运用显微技术中各种方法将其制成玻片标本,使组织细胞既能在光学显微镜下观察又可长期保存,结构对比变明显。一般可分为切片法和非切片法两类制片方法。 切片法:石蜡切片法;火棉胶切片法;冰冻切片法等。 非切片法:包括整体封藏法;涂布法;压片法,此外还有铺片、磨片等。 显微制片需经历一系列操作,相当细致而复杂,每一步骤的失误都可导致整体的失败,因此需要耐心细致,手脑并用。 切片法与非切片法比较 切片法能显示出组织、细胞内部的微细结构, 且对比非常明显清晰。但操作步骤多, 手续复杂, 制片速度慢,耗时较长。 如洋葱根尖纵切片中对线粒体、有丝分裂的观察; 小麦叶片横切和玉米叶横切中对细胞木质化细胞质、纤维素细胞质的观察。切片法是生物显微制片技术中最常用和最主要的方法, 其中又以石蜡切片法最为重要。 非切片法能保持生物体或某部分器官组织的原有状态及其完整性, 但因不经过切片手续, 不仅不能清晰地显示各器官组织之间的相互关系, 更无法显示组织和细胞之间的结构关系。 非切片法中整体切片法仅能对很小的材料制片, 如人体口腔上皮装片, 草履虫装片。涂片法仅对含有大量水分或完全为液体的组织或器官适用。 1 非切片法 1.1 涂片法 主要用于血液、精液、尿液、微生物液体培养物等不能用切片法制成薄片的液态颗粒性材料,可在载玻片上涂成单层细胞,还可再经固定,脱水,染色等手段制成永久标本。 1.2 铺片法 主要用于动、植物组织的表皮层观察,可活体取待观察动、植物组织,用尖镊子撕去一层表皮,迅速平铺在载玻片上。 如: 洋葱表皮细胞的铺片制备。 1.3 压片法 一些较幼嫩,柔软的材料可将其置载玻片上,用小解剖刀将其分散,加染料一滴,再盖上盖玻片,用拇指垂直用力挤压,使组织散成一薄片,再进行观察,如植物根尖压片观察染色体。 1.4 磨片 用于质地坚硬的组织,如骨和牙。 1.5 离析法 此法是利用化学试剂使组织的细胞间质溶解,使组织分散成单个游离细胞。如植物去壁低渗法制备染色体标本。 2 切片法 切片是供光学显微镜或电子显微镜观察的动植物组织薄片。 切片法是通过手工或切片机将组织切成薄片来进行观察的方法。需先经过一系列步骤将组织内渗入某些支持物质,使组织变硬以利于切成薄片,根据所用支持剂的种类不同,可分为徒手切片法,石蜡切片法,火棉胶切法,冰冻切片法等类型,切成薄片后还需要去蜡,染色,脱水,透明等步骤。 2.1 石蜡切片法 石蜡切片法包括以下各主要步骤: 取材→固定→洗涤和脱水→透明→浸蜡→包埋→切片与粘片→脱蜡→染色→脱水→透明→封片等步骤。 一般的组织从取材固定到封片制成玻片标本需要数日,标本片可以长期保存使用。 详细步骤和各个环节要求 取材:材料必须新鲜、完整,搁置时间过久则产生蛋白质分解变性,导致细胞自溶及细菌的滋生,且避免挤压、挫伤而不能反映组织活体时的形态结构。注明采集时间、地点、名称、组织部位等。组织块大小以0.5×0.5×0.2cm为宜。 固定:用化学药液浸渍切成小块的新鲜材料,迅速凝固或沉淀细胞和组织中的物质成分、终止细胞的一切代谢过程、防止细胞自溶或组织变化,尽可能保持其活体时的结构。此外固定还有使组织硬化作用,助染作用。此外还有物理方法如干燥、高热和低温骤冷等方法固定。 洗涤与脱水: 洗涤:固定后的组织材料需除去留在组织内的固定液及其结晶沉淀,以免影响以后的染色效果。多以流水冲洗。 脱水:洗涤后的组织内充满水分,需除去水分方可进行之后的透明、浸蜡与包埋。脱水用一种既能与水又能与透明剂混溶的液体来逐渐置换样品中游离的水。脱水剂常采用乙醇或丙酮、正丁醇、叔丁醇进行梯度脱水。每次时间为1~数小时。 脱水的过程:通常从30%或50%乙醇开始,一般是30%乙醇→50%乙醇→70%乙醇→80%→90%→100% →100% 脱水剂浓度不应跨度太大,以免引起组织强烈的收缩或变形。 透明 透明是用一种既能与脱水剂(乙醇)又能与包埋介质(石蜡)互溶的液体来置换样品中

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