实验动物采血技术知识给药技术知识(一).ppt

给药途径与方法 在动物实验过程中，应根据不同的实验目的、动物种类、药物类型来决定动物的给药途径与方法。动物的给药方法主要分为注射法和投入法两种，不同方法按给药途径又分为很多具体类型。注射法分为：皮下注射、肌肉注射、腹腔注射、脑膜下注射、脑内注射、胸腔内注射、腰椎内注射、静脉注射、关节腔注射和心内注射。 投入法可分为：鼻腔内投入、胃腔内投入、肠管内投入、气管内投入和经口腔投入。 以下将各种动物的主要给药途径和方法做一介绍。 （一）皮下注射 皮下注射部位一般狗、猫多在大腿外侧，豚鼠在后腿的内侧或小腹部；大白鼠可在侧下腹部。兔在背部或耳根部注射。蛙可在脊背部淋巴腔注射。 （二）皮内注射 皮内注射时需将注射的局部脱去被毛，消毒后，用左手拇指和食指按住皮肤并使之绷紧，在两指之间，用注射器连4(1/2)细针头，紧贴皮肤表层刺入皮内，然后再向上挑起并再稍刺入，即可注射药液，此时可见皮肤表面鼓起一白色小皮丘。 （三）肌肉注射 　　肌肉内血管丰富，注射后吸收较快，仅次于静脉注射；又因感觉神经较皮下少，故引起疼痛较轻，临床上应用较多。 1、部位 凡是肌肉丰富的部位，均可进行肌肉注射。犬猫在脊柱两侧的腰部肌肉或股部肌肉。 2、方法 局部消毒，将针头迅速刺入肌肉内，抽拔活塞无回血后缓慢注入药液。注射时，不要将针头全刺入肌肉内，以免折断时不易取出。 （四）腹腔注射 用大、小白鼠做实验时，以左手抓住动物，使腹部向上，右手将注射针头于左（或右）下腹部刺入皮下，使针头向前推?0.5～1.0cm，再以45度角穿过腹肌，固定针头，缓缓注入药液， 为避免伤及内脏，可使动物处于头低位，使内脏移向上腹。若实验动物为家兔，进针部位为下腹部的腹白线离开1cm处。 （五）静脉注射 1．兔：兔耳部血管分布清晰。兔耳中央为动脉，耳外缘为静脉。内缘静脉深不易固定，故不用。外缘静脉表浅易固定，常用。先拔去注射部位的被毛，用手指弹动或轻揉兔耳，使静脉充盈，左手食指和中指夹住静脉的近端，拇指绷紧静脉的远端，无名指及小指垫在下面，右手持注射器连6号针头尽量从静脉的远端刺入，移动拇指于针头上以固定针头，放开食指和中指，将药液注入，然后拔出针头，用手压迫针眼片刻。 2．小白鼠和大白鼠 一般采用尾静脉注射，操作时先将动物固定在鼠筒内或扣在烧杯中，使尾巴露出，尾部用45～50℃的温水浸润半分钟或用酒精擦拭使血管扩张，并可使表皮角质软化，以左手拇指和食指捏住鼠尾两侧，使静脉充盈，用中指从下面托起尾巴，以无名指和小指夹住尾巴的末梢，右手持注射器连4(1/2)号细针头，使针头与静脉平行（小于30℃），从尾下四分之一处（约距尾尖2～3厘米）处进针，此处皮薄易于刺入，先缓注少量药液，如无阻力，表示针头已进入静脉，可继续注入。注射完毕后把尾部向注射侧弯曲以止血。如需反复注射，应尽可能从末端开始，以后向尾根部方向移动注射。 3．狗 狗静脉注射多选前肢内侧皮下头静脉或后肢小隐静脉注射。注射前由助手将动物侧卧，剪去注射部位的被毛，用胶皮带扎紧（或用手抓紧）静脉近端，使血管充盈，从静脉的远端将注射针头平行刺入血管，待有回血后，松开绑带（或两手），缓缓注入药液。 （一）部位 犬猫均可在颈静脉沟上1/3与中1/3交界处进行静脉注射。犬还可在腕关节以上的前内侧或腕关节以下掌中部前内侧的静脉，或跗关节外侧上方的静脉、股内侧的静脉等注射。 注射途径 小鼠 大鼠 豚鼠 兔 狗 腹　　腔 0.2～1.0 1～3 2～5 5～10 5～15 肌　　肉 0.1～0.2 0.2～0.5 0.2～0.5 0.5～1 2～5 静　　脉 0.2～0.5 1～2 1～5 3～10 5～15 皮　　下 0.1～0.5 0.5～1 0.5～2 1～3 3～10 几种动物不同给药途径的常用注射量（毫升） （六）经口给药 　　多用灌胃法，此法剂量准确，适用于小白鼠、大白鼠、家兔等动物。 　 1．小鼠、大鼠（或豚鼠） 灌胃时将灌胃针按在注射器上，吸入药液。左手抓住鼠背部及颈部皮肤将动物固定，右手持注射器，将灌胃针插入动物口中，沿咽后壁徐徐插入食道。动物应固定成垂直体位，针插入时应无阻力。若感到阻力或动物挣扎时，应立即停止进针或将针拔出，以兔损伤或穿破食道以及误入气管。 　　一般当灌胃针插入小鼠3～4cm，大鼠或豚鼠4～6cm后可将药物注入。常用的灌胃量小鼠为0.2～ 1ml，大鼠1～4ml，豚鼠为1～5ml。 2．狗、兔、猫、猴? 灌胃时，先将动物固定，再将特制的开口器放入动物口中，开口器之宽度可视动物口腔大小而定， 灌胃时将开口器放于上述动物上下门牙之后，并用绳将它固定于嘴部，将带