在DNA聚合酶.PPT

聚合酶链式反应(PCR)  (Polymerase Chain Reaction) 实验目的 掌握PCR技术的原理及技术 模 板 单、双链DNA或RNA都可以作为PCR的样品。虽然PCR可以仅用极微量的样品（甚至是来自单一细胞的DNA），但是为了保证反应的特异性，一般用ng量级的克隆DNA，μg水平的染色体DNA或104拷贝的待扩增片段来做起始材料。原料可以是粗制品，但不能混有任何蛋白酶，核酸酶，TaqDNA聚合酶抑制剂以及能结合DNA的蛋白，因此DNA样品纯度要尽可能的高。 引 物 PCR反应产物的特异性由一对上下游引物所决定。下列原则有助于引物的合理设计： * 引物长度以15～30个碱基为宜。 * (G＋C)含量最好保持在约40%～60%，应尽量避免数 个嘌呤或嘧啶的连续排列。 * 避免引物内部形成二级结构。 * 两个引物之间不应发生互补。 * 引物浓度不宜偏高。 ????????dNTP浓度 高浓度dNTP易产生错误掺入，而浓度过低，势必降低反应产物的产量。PCR常用50－200μmol/L的dNTP，此外，dNTP能与Mg2＋结合，使游离Mg2＋浓度降低。因此，dNTP的浓度直接影响到反应中起重要作用的Mg2＋浓度。 Mg2＋浓度 * Mg2＋浓度对反应物的特异性及产量有显著影响。浓度过高，则DNA不易变性；浓度过低，使产物减少。 * 在各种单核苷酸浓度为200μmol/L时，Mg2+为1.5mmol/L较适合。若样品中含EDTA或其他螯合物，可适当增加Mg2+的浓度。在高浓度DNA及dNTP条件下进行反应时，也必须相应调节Mg2+的浓度。 PCR用酶的特性 TaqDNA聚合酶 Taq多聚酶从嗜热菌分离得到，现在经基因克隆的重组体产物Taq酶最适pH8.3-8.8(室温8.3-8.4),反应温度75-80℃, 95℃以上失活明显。无3′→5′校读活性，对SDS敏感。 在100μl反应液中，一般加入2.5U的酶量，足以达到每分钟延伸1000～4000个核苷酸的掺入速度。酶量过多导致产生非特异性产物。 PCR反应参数 变性温度与时间 94-95度/1min 可以满足一般要求 变性时间过长易造成酶失活 退火温度 一般设定比理论Tm低5℃，但实际上与引物一级结构序列有关，设计不当可造成非特异性扩增，此时应调整温度和相应的时间，一般提高温度会增加扩增的特异性。短时间退火有利于产物的特异性。 延伸温度和时间 延伸温度一般72度。 延伸时间决定于酶的反应速度和扩增片段长度。 实验操作 1 取一个0.2ml eppendorf管，添加以下各种成分反应液 ddH2O 11.8 μl 模板DNA 1 μl 上游引物(2.5μmol/L) 1.6 μl 下游引物(2.5μmol/L) 1.6 μl dNTP mixture(2.5mmol/L) 1.6 μl 10倍×缓冲液+ MgCl2 2 μl Taq酶 （2.5 U /ul） 0.4 μl 总体积 20 μl 2 稍作离心,将反应管放入PCR仪中。 3. 设定反应程序： 94℃条件下使模板DNA预变性3min。 变性 94℃ 30sec 退火 54℃ 30sec 30 cycles 延伸 72℃ 1min 30sec 最后在72℃条件进行延伸7-10min。 4 ℃保温 4. 取5 μl反应液用1%琼脂糖凝胶进行电泳,鉴定PCR产物是否存在以及大小。 * * PCR（Polymerase Chain Reaction）法，又称为聚合酶链反应或PCR扩增技术，