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葡聚糖凝胶柱层析 分离纯化蛋白质 教学目标 了解:层析技术的基本原理; 有效分配系数Kav的计算。 理解:葡聚糖凝胶的选择和准备。 掌握:凝胶层析的原理和操作方法; 有效分配系数Kav的意义。 重点: 凝胶层析的原理和实验步骤。 分配系数与被分离分子量之间的关系。 难点: 掌握装柱,加样,洗脱,收集样品的操作步骤。 蛋白质的分离纯化 蛋白质分离纯化的方法很多,主要是根据蛋白分子之间特异性的差异,如分子大小,溶解度,电荷等建立起来的。 凝胶层析(又叫分子筛层析或排阻层析)指混合物随流动相经过装有凝胶作为固定相的层析柱时,各组分因分子大小不同而被分离的技术。 凝胶:一些具有立体网状结构 和一定孔径的高分子化合物。 凝胶层析过程的数理关系 洗脱体积(Ve):自加入样品时算起,到组分最大浓度出现时所流出的洗脱液体积。 凝胶层析的分配系数 分配系数Kav:表示任何一种被分离的化合物被凝胶排阻的程度。 Kav与凝胶柱的总体积Vt、外水体积Vo、洗脱体积Ve有关: Vt和Vo恒定,Ve随分离物分子量的变化而变化 葡聚糖凝胶柱层析法的特点 天然凝胶:一些糖类物质,如淀粉、琼脂及琼脂糖等。 人工合成凝胶:葡聚糖凝胶和聚丙烯酰胺凝胶两大类。 葡聚糖凝胶(Sephadex):由许多右旋葡萄糖单位通过 1,6-糖苷键联结成链状结构,再由交联剂交联形成不溶 水的多孔网状高分子化合物。 型号:G200、 G150、 G100、 G75、 G50、 G25、 G15 本实验中用Sephadex G 50(分离分子量范围1500~20000),以蒸馏水为洗脱剂。 待分离的蛋白质混合物: 蛋白A(黄色,分子量在G 50的分离范围内)蛋白B(蓝色,分子量大于G 50的分离范围) 实验步骤 凝胶的准备 2. 装柱(2~3人一组) 层析柱洗净后,将层析柱烧结板下端的死区用蒸馏水充满(注意:不得留有气泡,可多加约1cm高水层,使柱内凝胶通过沉积作用更加均匀),然后关闭层析柱的出口。 将已溶胀的凝胶悬液沿玻璃棒小心地徐徐灌入柱中,待底部凝胶沉积1~2cm时,再打开出口,继续加入凝胶悬液至凝胶沉积约10cm高即可(注意:凝胶悬液尽量一次加完,以免出现不均匀或分层的凝胶带)。 反复加蒸馏水,平衡10min。 3. 加样与洗脱 加样时先将柱的出口打开,让蒸馏水逐渐流出,待凝胶床面只留下极薄的一层蒸馏水时,关闭出口(注意:不可使凝胶柱表面干涸,可预留约0.2cm高水层)。 用移液枪将200μl样品小心加到凝胶柱表面(注意:加样时垂直伸入柱内,接近液面处集中滴加,动作要轻柔)。 然后打开出口,使样品进入床面,滴加1~2倍样品体积的蒸馏水(注意:轻柔滴加)。 待样品完全流入床内后,再加蒸馏水进行扩展洗脱。 4. 样品收集:样品一旦加入后马上用烧杯收集流出液,注意柱床上要不断加水,直到两种蛋白全部洗脱。倒出凝胶,清洗层析管。 5. 结果分析:分析为什么这两种蛋白能在凝胶柱中分离开。 注意事项 装柱时需保持柱体垂直于水平面,在平衡完毕前不可随意晃动层析柱,以保持凝胶柱表面平整。 实验过程中需密切注意保持层析柱中的凝胶始终处于蒸馏水中,防止蒸馏水排空。 移液器使用: 选择适当量程 正确安装枪头 吸液第一档,放液第二档 垂直吸液,慢吸慢放 吸液后不可将枪平放 使用完后调至最大量程 小 结 凝胶层析的原理:混合物随流动相经过装有凝胶作为固定相的层析柱时,各组分因分子大小不同而被分离。 凝胶层析分配系数:被分离的化合物被凝胶排阻的程度。Kav = (Ve — Vo)/(Vt — Vo) 葡聚糖凝胶柱层析:葡聚糖凝胶为多孔网状高分子化合物及交联度G的意义。 掌握装柱、加样、洗脱、收集样品的操作。 实验结果 思考题 为什么分离物分子量越大Kav值越小? 用凝胶柱层析分离不同蛋白质,怎样才能得到较好的分离效果? * * 方法 性质 亲和层析 对配体分子的亲和力 吸附层析 吸附性质 电泳、离子交换层析等 电荷 等电点沉淀、盐析、有机溶剂沉淀等 溶解度 透析、超滤、密度梯度离心、凝胶层析等 分子大小 凝胶层析的基本原理 分子大于凝胶孔隙范围的物质: 随着溶剂在凝胶颗粒间流动 分子小于凝胶孔隙范围的物质: 渗

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