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人sTNFR1基因原核表达及体外抗肝细胞凋亡活性研究.docVIP

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人sTNFR1基因原核表达及体外抗肝细胞凋亡活性研究

人sTNFR1基因原核表达及体外抗肝细胞凋亡活性研究   彭仕芳 傅 蕾 谭德明 候周华 刘洪波   摘要:采用RT-PCR,从Hela细胞的mRNA中扩增人STNFR1基因,构建含有目的片段的T载体克隆及原核表达载体pMAL-c2x重组质粒亚克隆,转化入大肠杆菌,测序证实其序列与基因数据库中STNFRl基因一致,经异丙基,-β-D半乳糖苷酶(IPTG)诱导表达,淀粉树脂亲和层析法纯化,得到融合蛋白STNFR1-MBP,结果显示:经Western-blotting检测,STNFR1-MBP具有免疫活性;流式细胞术检测目的蛋白对TNF-α诱导QSG7701凋亡有抑制作用,这为今后的研究打下了基础。   关键词:人STNFRl;原核表达;抗肝细胞调亡   中图分类号:R575.3   文献标识码:A   文章编号:1007-7847(2007)02-0147-06      肿瘤坏死因子α(Tumor Necrosis Factor α,TNFα)是由单核,巨噬细胞分泌的具有多种生物学活性的细胞因子,能诱发肝细胞坏死和凋亡,其过度表达是肝功能衰竭发生发展过程中的一个重要因素,TNFα生物学作用通过特异性受体介导,而TNFα的可溶性受体(STNFR1)可中和TNFα的毒性作用,为有效抑制TNFα所诱发的细胞毒作用以及治疗肝功能衰竭,本研究从克隆STNFR1基因、构建原核表达质粒人手,获得了具有生物学活性的重组蛋白sTNFR1-MBP,为进一步研究该蛋白在肝功能衰竭的作用奠定基础。      1材料与方法      1.1材料   1.1.1细胞株、菌种与质粒   QSG7701人非致瘤性肝细胞株由中南大学湘雅医学院病理教研室所赠,JM109由我室保存,pGEM-T载体购自Promega公司,表达载体pMAL-c2x购自NEB公司。   1.1.2酶及主要试剂   TaqDNA聚合酶、rr4DNA连接酶、Sal I、EcoR I购自TakaRa公司,MMLV逆转录酶和WFG购自Promega公司,DNA凝胶纯化试剂盒购自QIA-GEN公司,淀粉树脂购自NEB公司,麦芽糖购自Sigma公司,Annexin-V-FITC凋亡检测试剂购自生物晶美公司,TNF-a、兔抗人STNFR1多克隆抗体购自PEPROTECH公司,Western blotting检测试剂盒购自博士德公司,TRIzol Reagent RNA分离液、DMEM(高糖)、新生牛血清购自美国GIBCOBRL公司产品,放线菌素-D购自北京夏斯生物公司,常用试剂为国产或进口分析纯。   1.1.3仪器   核苷酸测序使用ABl377全自动测序仪及配套的BigDye Terminator??剂盒测序,由博亚公司完成;流式细胞仪(FCM)为美国Becton Dickinson公司产品。      1.2方法   1.2.1 RT-PCR扩增sTNFR1目的片段   PCR引物参照人可溶性肿瘤坏死因子受体1(sTNFR1)cDNA全序列设计,由上海博亚公司合成,上下游引物5′分别加入Sa/I和EocR I酶切位点,上游引物:5′-GAA TCC ATG GAT AGTGTG TGT CCC C-3′;下游引物:5′-GTC GAC GGATCC TCA AAT GAT CAG GGG CAA C-3′,按TRI-zol说明书自Hela细胞中提取总RNA作为逆转录模板,采用RT-PCR方法扩增sTNFR1基因,逆转录反应条件参照MMLV逆转酶说明书进行:取总RNA 3μg,oligo(18)0.5μg,加DEPC水至总体积12μL,70℃5 min后,立即置于冰上;然后加入5xRT Buffer 5μL,dNTP 12.5 nmol,RNA酶抑制剂25U,MMLV逆转录酶200 U,加DEPC水至总体积25μL,42℃60 min逆转录,逆转录后产物为cDNA,PCR反应体系为DNA2μL。TaqDNA聚合酶0.5u,10xBuffer(Mg2+)5L,10mmol/L dNTP34μL,人sTNFR1引物各25pmo1,加双蒸水至总体积50μL l.PCR条件:95℃5min预变性,94℃40 s变性,55 qC 40 s退火,72℃lmin延伸,32个循环后,72℃延伸15min,   1.2.2构建原核表达质粒   PCR产物纯化后,首先应用T载体克隆,然后从重组的“T”质粒DNA中,应用Sal I、EocR I双酶切出sTNFR1基因片段,与用相同酶切后的pMAL-c2x质粒DNA连接重组,转入感受态细菌JM109,挑取阳性克隆,接种于含有100mg/L氨苄青霉素的LB培养过夜生长,提取质粒,Sal I和EocR I双酶切分析,并且

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