2016-2017年水资源设计性实验参考（总结).doc

“水资源利用与保护”课程设计性实验 利用浮萍生物修复校园富营养化水体的试验研究 班级： 学号： 姓名： 2011.4 目 录 摘要： 关键词： 1实验背景 1.1实验目的 1.2实验意义 1.3实验可行性 1.4实验内容 2实验方案 2.1试验材料的来源与处理 2.1.1供试浮萍的准备 试验中采用本地浮萍品种少根紫萍和稀脉浮萍作为供试材料。将两种浮萍预先置于稀释20倍的Hoagland营养液中放大培养两周（营养液中氮浓度为4.97mg/l，磷浓度为0.78mg/l，N：P≈6.4:1），达到一定生物量后，经自来水漂洗后用作试验材料。 2.1.2富营养化水体的来源及水质 来源：扬州大学扬子津校区河内。 水质：pH、CODCr、总氮、氨氮、硝氮、总磷、SS、色度等。 人体非直接接触的娱乐性景观水体标准 水质国家标准 CODcr (mg/l) 总氮或氨氮 (mg/l) 总磷 (mg/l) p H SS (mg/l) 色度 人体非直接接触的娱乐性 景观水体标准 60 氨氮15 2 6.5- 9.0 20 30 2.2试验方法 2.2.1处理方法 试验于2011年*月*日开始，采用小型塑料周转箱（长18.5cm，宽13cm，高5.8cm）作为试验容器，加入700ml供试水，再将预先培养好的两种浮萍投加鲜重1.2g到各自处理中。每种浮萍处理设15个重复，并以不加浮萍的水样为对照，设3个重复。所有处理均置于人工气候室培养、观察。试验期间记录每日室内最高气温、最低气温，以及水温、光照强度等。试验期间，每三天对两种浮萍处理分别随机取3个重复，对照组也取3个重复，同时将剩余重复换上700ml原供试水（使试验期间供试水各组分浓度基本保持恒定及防止藻类繁生）。对所取的各处理重复捞出全部浮萍，称量鲜重后烘干称重并测体内氮、磷含量，测定各处理和对照水样的体积、pH、TN、TP和NO3-，试验假设每种浮萍的15个重复之间浮萍生长情况和水质变化基本一致。 2.3分析项目与方法 2.3.1鲜重及干重 浮萍鲜重测定方法采用与国外相关研究一致的方法[8], 即用滤水网斗将需测定鲜重的浮萍从水中捞起, 滤去自由水(无水滴出现) , 将待测浮萍平铺在吸水的卫生纸垫上,吸水5分钟后, 用精度为0.01 g 的电子天平秤重。测定鲜重后, 将浮萍置于75℃的烘箱内烘干24h, 称量干重。 2.3.2水质指标测定方法 DO采用美国YSI550A溶氧仪；COD采用重铬酸钾回流加热法；BOD采用稀释接种法；TN采用过硫酸钾氧化-紫外分光光度法；TP采用过硫酸钾消解-钼锑抗分光光度法；硝氮采用双波长比色法；色度采用铂钴标准比色法。 2.3.3浮萍体内氮、磷含量 浮萍体内全氮采用H2SO4-H2O2-扩散法，全磷采用H2SO4-H2O2-钼锑抗比色法。 3实验结果 3.1浮萍生物量 表1 浮萍在供试水中的生长状况 培养时间 鲜重(mg) 干重(mg) 少根紫萍 稀脉浮萍 少根紫萍 稀脉浮萍 第1天 第4天 第7天 第10天 第13天 第16天 增长倍数 RGR 浮萍相对生长率（relative growth rate,RGR）的计算 RGR=(lnNt- lnN0)/t Nt：t时刻种群生物量 N0：初始时刻种群生物量 t：种群增长时间 相同时间内，浮萍的相对生长率（RGR）越大，种群增长越快。 3.2浮萍氮、磷积累量 3.2.1浮萍体内氮、磷含量 表2 浮萍体内含磷量（%） 培养时间 0 3 6 9 12 15 少根紫萍 稀脉浮萍 表3 浮萍体内含氮量（%） 培养时间 0 3 6 9 12 15 少根紫萍 稀脉浮萍 3.2.2浮萍体内氮、磷积累量 表4 浮萍体内氮积累量（mg/pot） 培养时间 0 3 6 9 12 15 少根紫萍 稀脉浮萍 表5 浮萍体内磷积累量（mg/pot） 培养时间 0 3 6 9 12 15 少根紫萍 稀脉浮萍 3.3水质变化 3.3.1 水体pH的变化 表6 水体pH 培养时间（天） 0 3 6 9 12 15 少根紫萍 稀脉浮萍 对照 3.3.2 水体DO的变化 表7 水中DO（mg/m2） 培养时间（天） 0 3 6 9 12 15 少根紫萍 稀脉浮萍 对照 3.3.3水中总氮去除效果 表7 水中总氮去除量 培养时间