实验八线粒体与液泡系的超活染色与观察.pptVIP

实验八、线粒体和液泡系的超活染色与观察 一、实验目的： 1、观察动、植物活细胞内线粒体、液泡系的形态、数量与分布。 2、学习一些细胞器的超活染色技术。 二、实验原理： 活体染色是指对生活有机体的细胞或组织能着色但又无毒害的一种染色方法。它的目的是显示生活细胞内的某些结构，而不影响细胞的生命活动。 根据所用染色剂的性质和染色方法的不同，通常把活体染色分为体内活染与体外活染两类。体内活染是以胶体状的染料溶液注入动、植物体内，染料的胶粒固定、堆积在细胞内某些特殊结构里，达到易于识别的目的。体外活染又称超活染色，它是由活的动、植物分离出部分细胞或组织小块，以染料溶液浸染，染料被选择固定在活细胞的某种结构上而显色。 詹纳斯绿Ｂ（Janus green B）可专一性地对对线粒体进行活染,这是由于线粒体内的细胞色素氧化酶系的作用，使染料始终保持氧化状态(即有色状态),呈蓝绿色。 中性红（neutral red）对液泡系的染色具有专一性，将活细胞中的液泡系染成红色。 三、实验用品 1. 器材： 显微镜、恒温水浴锅、、剪刀、镊子、解剖刀、载玻片、盖玻片、吸管、牙签、吸水纸 2. 试剂： Ringer液、1/5000詹纳斯绿B、1/3000中性红 3. 材料：人口腔上皮细胞、小白鼠肝细胞、洋葱鳞茎内表皮细胞、小麦或黄豆幼根根尖。 四、实验方法 （一）线粒体的超活染色与观察 1、人口腔黏膜上皮细胞线粒体的超活染色观察 1）取清洁载玻片放在37℃恒温水浴锅的金属板上，滴两滴1/5000詹纳斯绿B染液。 2）实验者用牙签宽头在自己口腔颊粘膜处稍用力刮取上皮细胞，将刮下的粘液状物放入载玻片的染液滴中，染色10——15分钟（注意不可使染液干燥，必要时可再加滴染液），盖上盖玻片，用吸水纸吸去四周溢出的染液，置显微镜下观察。 3）在低倍镜下，选择平展的口腔上皮细胞，换高倍镜或油镜进行观察。可见扁平状上皮细胞的核周围胞质中，分布着一些被染成蓝绿色的颗粒状或短棒状的结构，即是线粒体。 2、小白鼠肝细胞线粒体的超活染色观察 1) 用脊椎脱臼法处死小白鼠，置于解剖盘中，剪开腹腔，取小白鼠肝边缘较薄的肝组织块，放入表面皿内。用吸管吸取Ringer 液，反复浸泡冲洗肝脏，洗去血液。 2) 在干净的凹面载玻片的凹穴中, 滴加1/5000詹纳斯绿B溶液，再将肝组织块移入染液，注意不可将组织块完全淹没，要使组织块上面部分半露在染液外，这样细胞内的线粒体酶系可充分得到氧化，易被染色。当组织块边缘被染成蓝绿色即成(—般需染20～30min)。 3) 吸去染液，滴加Ringer 溶液，用眼科剪将组织块着色部分剪碎，使细胞或细胞群散出。然后，用吸管吸取分离出的细胞悬液，滴一滴子载玻片上，盖上盖玻片进行观察。 4) 在低倍镜下选择不重叠的肝细胞，在高倍镜或油镜下观察，可见具有l～2 个核的肝细胞质中，有许多被染成蓝绿色的线粒体，注意其形态和分布状况。 3、洋葱鳞茎表皮细胞线粒体的超活染色观察 1）用吸管吸取1/5000詹纳斯绿B染液，滴一滴于干净的载玻片上，然后，撕取一小片洋葱鳞茎内表皮，置于染液中，染色10—15分钟。 2）用吸管吸去染液，加一滴Ringer液，注意使内表皮组织展平，盖上盖玻片进行观察。 3）在高倍镜下，可见洋葱表皮细胞中央被一大液泡所占据，细胞核被挤至一侧贴细胞壁处。仔细观察细胞质中线粒体的形态与分布。 （二）液泡系的超活染色与观察 1、小麦或黄豆根尖细胞液泡系的中性红染色与观察 1) 实验前，将小麦或黄豆种子培养在培养皿内潮湿的滤纸上，使其发芽，胚根伸长到1cm以上。 2) 取初生的小麦或黄豆幼苗根尖（约1—2cm长）,置于载波片上,滴一滴Ringer液，用镊子或刀片小心将根尖压成一薄片，吸去Ringer液，在材料上滴一滴1/3000中性红染液，染色5—10分钟。 3) 吸去染液，滴一滴Ringer液，盖上盖玻片，并用镊子轻轻地下压盖玻片，使根尖压扁，利于观察。 4) 在高倍镜下，先观察根尖部分的生长点的细胞，可见细胞质中散在很多大小不等的染成玫瑰红色的圆形小泡，这是初生的幼小液泡。然后，由生长点向延长区观察，在一些已分化长大的细胞内，液泡的染色较浅，体积增大，数目变少。在成熟区细胞中，一般只有一个淡红色的巨大液泡，占据细胞的绝大部分，将细胞核挤到细胞一侧贴近细胞壁处。 2、洋葱表皮细胞液泡系的活体染色与观察： 1）撕取洋葱鳞茎内表皮 2）置于加有一滴1/3000的中性红染液的载玻片中，染色 5—10分钟 3）用吸水纸吸去染液，换上Ringer液，盖上盖玻片 4）显微镜下观察，可见被染成砖红色