免疫组化过程基本技术.pptVIP

免疫组化染色过程中的基本技术 虽然免疫组化染色方法有多种，但在染色中都需要采取一些基本的技术方法。 一、蛋白酶消化技术 目的：使抗原决定簇充分暴露出来，并使组织的通透性升高，以利于抗原抗体最大限度结合，增强特异性染色。 胰蛋白酶、胃蛋白酶是实验室中最常用的两种消化酶。 消化时间因组织而异，一般为5～30分钟。 消化结束后要充分洗涤。 1.0.1%胰蛋白酶： 胰酶0.1g+0.1%cacl,用0.1mol/LNaOH调PH至7.8，消化温度为室温或37℃，5～30min。 2.0.4%胃蛋白酶： 胃蛋白酶0.4g+0.1mol/L Hcl 100mol。 二、非特异性染色控制 造成非特异性染色的原因： 1.从组织方面分析：自发的荧光、内源性过氧化物酶、碱性磷酸酶、内源性生物素等； 2.从试剂方面看：用于标记的酶和荧光不纯或标记过量等原因引起。 消除非特异性染色的方法： 最常用的方法是再加第一抗体前，先用制备第二抗体动物的非特异血清作用10～30min,以封闭组织中带电荷的基团，避免与第一抗体非特异性结合。此外，如作免疫荧光染色时，可用0.01%～0.05%伊文斯兰稀释荧光抗体；如作免疫酶组织化学染色时，再加一抗前先用0.3% ～ 3%的H2O2甲醇溶液处理切片5～30min. 三、对照试验 为了对染色结果作出正确的判断，染色中用已知抗原为阳性的标本与带检测标本同时进行免疫组化染色，呈阳性反应者为阳性对照。 如果用确认不含已知抗原的标本作对照，染色结果为阴性者称阴性对照。 除此之外，空白、替代、吸收和抑制试验等也属于阴性对照。 当染色结果所显示的是阳性对照片呈阳性、阴性对照片呈阴性时，表明被检测切片的标记结果正确可靠。 四、抗体的分装、稀释、滴加及保存 1.抗体的分装 目的：将一次不能使用完的抗体根据用量进行分装。 分装后的抗体宜保存在-20～-40的低温冰箱中，一般数年有效。 分装后的抗体尽量一次用完，避免反复冻融而使抗体效价降低。 2. 抗体的稀释 抗原抗体的结合除了与它们之间的特异性外，还与两者之间的分子比例密切相关。如果抗体分子过多，阳性反应减弱甚至出现假阴性。 （1）影响抗体稀释度的因素 1）抗体的浓度：抗体浓度越高稀释度就越高。 2）抗体中的非特异蛋白的含量： 3）孵育时间：适当延长可提高抗体的稀释度。 4）染色方法：不同染色方法的灵敏度有别，其抗体的稀释度也不一样，如间接法较直接发灵敏；ABC法较PAP灵敏。 灵敏度越大抗体的稀释度可随之提高。 （2）抗体稀释度的测定方法： 为准确了解抗体的稀释度，常将抗体按不同浓度稀释，对已知抗原为阳性的切片进行染色，并将特异性染色与背景染色的强弱以“+”的多少表示，测定方法有以下两种： 1）直接测定法 在其他条件已知的情况下将一抗按1：50、1：100、1：200、1:400、1：500等浓度稀释，分别滴加在切片上染色，同时设定阴、阳性对照，染色结果可用下表表示。 2）棋盘测定法 当对一抗、二抗或三抗的最佳稀释度都未知时，就必须采用此法进行测定。 在实际工作中，试剂公司所售抗体均已标明该抗体的稀释度。 （3）抗体的稀释方法 常用0.01mol/L PBS或TBS缓冲液即可。如稀释后的抗体需长时间保存，则另有配制方法：明胶+TBS+牛血清+NaN3，4℃度保存。 3.滴加抗体的方法 免疫组化染色时，再不使组织干燥的前提下，切片上所滴加抗体溶液应以充分覆盖组织切片为准，一般用微量加样器加30~50μl即可。加液前常用蜡笔或特制免疫组化笔在组织周围画一个圈，以阻止溶液扩散。 4.抗体的保存及与有效期 （五）孵育方法及时间 抗体的孵育应在特质的湿盒中进行，以免切片因水分蒸发而干燥、使染色失散。 孵育时间常为一小时左右，温度为室温或37℃.孵育时间也可根据抗体的效价及检测方法的灵敏度进行适当的延长或缩短，延长孵育时常在4℃冰箱过夜。 （六）切片的洗涤 滴加抗提前应用0.01mol/LPBS充分洗涤切片，可浸洗或淋洗，每次10min,共3次。 （七）显色 显色是免疫酶组织化学方法的步骤之一，将配制好的显色液滴加在切片上，通过酶的催化作用使显色液中的底物产生着色沉淀。光镜下观察显色效果，以控制染色时间，一般室温下显色5～15min即可。不同的酶所用底物不同，常在显色前临时用缓冲液配制。 1.辣根过氧化物酶（HRP）显色液的配制： HRP+DAB+H2O2（二氨基联苯胺）=显色（棕黄） 用硫酸氨镍或锇酸处理可使DAB的显色加深。 ?DAB—H2O2的配制 1.在5mol 0.05mol PH7.6 Tris—HCl中加入2mg DAB反复吹打，使DAB充分溶解； 2.0.5%H2