实验三_质粒DNA的提取与酶切课件.ppt

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实验三_质粒DNA的提取与酶切课件

实验安排 上午: 质粒DNA提取 限制性内切酶酶切鉴定 琼脂糖凝胶制备 下午: 酶切产物的电泳 紫外分光光度法检测DNA 实验课题设计的要求与安排 1 实验步骤: 加1.5ml培养物于EP管,12000rpm×30s ? 去上清(除净),加入150μl 溶液I,充分重悬 ? 加入200μl 溶液II,立即、轻柔振荡数次 ? 加入150μl 冰溶液III,震荡10s,冰浴3~5min, 12000rpm×10min 转移上清到新EP管,加入1/2体积酚 加入1/2体积的氯仿:异戊醇 (共约450μl)(酚/氯仿/异戊醇 ----25/24/1) 振荡混匀,离心12000rpm×5min 转移上清到新EP管, 加入等体积氯仿:异戊醇(共约450μl) 振荡混匀,离心12000rpm×5min 转移上清到新EP管 加入2倍体积95%乙醇(约800μl)混匀,静置5分钟以上 离心12000rpm×15min 弃上清, 100 μl 75%乙醇洗沉淀,12000rpm×2min? 弃上清,静置干燥,0.1×TE 20 μl 溶解DNA 酶切鉴定(16 μl) 分离纯化质粒DNA 的三个主要步骤: ①培养细菌使质粒扩增 ②细菌的收集与裂解 ③质粒DNA的纯化 所有纯化方法都是利用了质粒DNA分子相对较小及共价闭合环状的性质。 碱法抽提质粒的主要试剂的作用原理 溶液Ⅰ:由葡萄糖、EDTA、Tris?Cl组成. 葡萄糖的作用是增加溶液的粘度,减少抽提过程中的机械剪切作用,防止破坏质粒。 EDTA 的作用是络合掉镁等二价金属离子,防止DNA酶对质粒分子的降解作用。 Tris?Cl能使溶菌液维持溶菌作用的最适PH范围。 溶液Ⅱ:SDS、NaOH SDS的作用:解聚核蛋白、并与蛋白质结合使之变性; NaOH的作用:破碎细胞,使DNA分子变性。 质粒的三种构型: 闭合环状DNA 开环DNA——如果两条链中有一条发生一处或多处断裂,分子因旋转而消除链的张力。 线状DNA——如果两条链均断开,即为 线状DNA。 3 注意点: 提取的DNA不纯,含有其它杂质(蛋白、多糖) 变性不充分; 关键过程反应时间过短; 离心时间或速度不够。 提取的DNA成涂布状: 操作过程中用力过猛,动作粗暴; 操作系统有污染。 混有染色体DNA: 变性过程不完全, 试剂配置有问题。 第二部分:酶切鉴定(双酶切) 反应体系(20μl) 分3大组,每组约10-12人 每大组配置一份“母液” 混匀“母液”,分装(4 μl/人) 每人将酶切底物(质粒)与反应体系(分装的“母液”)混合 充分混匀,瞬时离心 37?C,1-3小时 电泳检测 基因克隆示意图 基因工程诞生的技术突破 限制性内切酶(restriction enzymes) 1970年H. O. Smith等分离出第一种限制性核酸内切酶。 限制性核酸内切酶 是一类能够识别双链DNA分子中的某种特定核苷酸序列(4—8bp),并由此处切割DNA双链的核酸内切酶 来源:原核生物 功能:自我保护——细菌的限制和修饰系统(R/M体系) pUC119物理图谱 质粒酶切电泳结果分析与小结: 第三部分 紫外分光光度计检测DNA 特点 灵敏度高:测定下限可达10-5~10-6 mol/L, 准确度能够满足微量组分的测定要求: 相对误差2~5% 操作简便快速 应用广泛 光学光谱区 (真空紫) 远红外 中红外 近红外 可见 近紫外 远紫外 10nm~200nm 200nm ~380nm 380nm ~ 780nm 780 nm ~ 2.5 ?m 2.5 ?m ~ 50 ?m 50 ?m ~300 ?m 氢灯 复合光 (阳光及钨灯) 发射光谱 红 橙 黄 绿 青 蓝 紫 单色光 三棱镜 可见光分光光度计光源 紫外分光光度计光源 光学原理 吸收光谱 在光源和棱镜之间放上某种物质的溶液, 光源发射光谱中某些波长的光因溶液吸收 而消失,这种被溶液吸收后的光谱称为该 溶液的吸收光谱。 苯和甲苯在环己烷中的吸收光谱 苯(254nm) 甲苯(262nm) A ? 230 250 270 Lambert-Beer定律 A或D=K C L 吸光度 摩尔消光系数 吸收物质的光径(cm)

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