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vegf-c表达和喉癌瘤内及瘤周淋巴管生成及与颈淋巴转移关系的研究.pdf

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vegf-c表达和喉癌瘤内及瘤周淋巴管生成及与颈淋巴转移关系的研究

山西医科大学硕士学位论文 第一章 材料与方法 1材料来源 状细胞癌的组织蜡块和对应手术切缘的组织蜡块,每例均有完整的临床资料,其中男性27 有患者术前均未接受任何化疗或放疗,喉原发灶标本经病理诊断证实均为喉鳞状细胞癌; 根据术后病理学检查结果判定颈淋巴结转移状态。 每例患者的喉癌组织标本均于手术当中标本离体后l小时内采集,所有标本均按照无 菌操作方法采集,组织离体后立即用生理盐水冲洗掉血迹,用无菌手术刀片分别切取瘤内、 瘤周及正常区域组织标本各30例,其中瘤周区域标本均取自肉眼见喉癌原发灶外距癌组织 边缘1.0cm以内的喉粘膜:正常区域组织标本均取自肉眼见喉癌原发灶外距癌组织边缘 2.0cm以外的喉粘膜。组织切取后立即置于编好号的Alpdose管中,经液氮速冻,然后置于一80 ℃冰箱中保存备用。 2试剂 2.1免疫组化试剂 鼠抗人单克隆抗体D2.40、PV9000检测盒、DAB显色剂均购自北京中杉公司。 2.2RT.PCR主要试剂 总RNA抽提试剂为河南华美生物工程公司 RT-PCR试剂盒为大连宝生物(TaKaRa)工程公司 DL2000DNA MARKER为大连宝生物(TaKaRa)工程公司 3仪器 3.1免疫组化仪器 石蜡切片机: 德国LEICARM2135 台式干燥箱: 国产JC303型 显微镜: 日本Olympus 3.2RT.PCR仪器 一80℃深低温冰箱:SANYO日本 UV-1201型紫外分光光度计:SHIMADZU日本 HERMLEZ383K高速低温离心机:德国 DIAX600匀浆器:美国 Heidolph Power/PAC3000电泳仪:美国 1DKodak凝胶自动成像及分析系统:美国 超净工作台:北京半导体设备一厂 山西医科大学硕士学位论文 4免疫组织化学方法 4.1载玻片处理与切片制作 4.1.1将载玻片酸液浸泡过夜,自来水反复冲洗,蒸馏水洗涤,置60℃温箱内烘干。 酮溶液中涮去未结合的APES,置通风橱中或自然晾干即可。 4.1.3将选好的蜡块,3--5um连续切片,60。C温箱烤片2小时。 4.2 HE染色及光镜观察 4.2.1取存档蜡块4um连续切片,置入二甲苯I脱蜡5分钟,二甲苯II脱蜡3分钟。 4.2.2 95%,90%,85%酒精各1分钟脱水,自来水洗2分钟。 4.2.3苏木素染色1-5分钟,自来水冲洗30秒。 4.2.4 l%盐酸酒精分化3秒,自来水冲洗30秒。 4.2.5 0.2%氨水返蓝10秒,自来水冲洗30秒。 4.2.6酸化沉淀伊红染色液染色l~5分钟,自来水冲洗30秒。 4.2.7 70%,95%,100%酒精脱水各1分钟,二甲苯I透明2分钟,二甲苯II透明2分钟。 4.2.8中性树胶封片。 4.2.9观察方法:每例标本取5张不连续的切片,显微镜下观察。 4.3免疫组织化学法染色程序(通用型二步法) 4.3.1切片脱蜡至水:二甲苯脱蜡10分钟x2次,无水酒精x2次,90%、70%酒精各一次。 4.3.2新鲜配置的3%双氧水室温10--一15分钟,以消除内源性过氧化物酶活性。 4.3.3蒸馏水洗2分钟,PBS洗2分钟×3次。 4.3.4微波修复抗原:将切片浸入O.01M枸橼酸盐缓冲液(PH6.0)放入微波炉中,待微 波炉温度升至100℃后煮沸5分钟后,室温冷却待水温降到45。C以下取出,PBS洗2分钟 ×3次。 4.3.5滴加5%BSA封闭液,37。C温箱孵育20分钟。甩去多余液体,不洗,以消除非特异 性染色。 分钟×3次。 4.3.7滴加试剂l,37。C温箱孵育20分钟,PBS洗2分钟×3次。 4.3.8滴加试剂2,37。C温箱孵育20分钟,PBS洗2分钟×3次。 4.3.9DAB显色:使用DAB显色试剂盒。取lml蒸馏水,加试剂盒中A,B,C试剂各一滴, 混匀后加至切片,室温显色,镜下控制反应时间,蒸馏水洗涤。 4.3.10苏木素轻度复染,脱水,封片,显微镜观察。 4.4结果的判定 D2.40标记的淋巴管计数方法:低倍显微镜下观察黄至棕黄色着色的阳性管腔结构,选

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